體內(nèi)堿性彗星試驗(yàn)在化合物遺傳毒性評價中的應(yīng)用日益廣泛。ICH S2(R1)已將肝臟彗星試驗(yàn)列為第2個組織/終點(diǎn)的體內(nèi)試驗(yàn)；體內(nèi)哺乳動物堿性彗星試驗(yàn)的指導(dǎo)原則（TG489）也已頒布。體內(nèi)堿性彗星實(shí)驗(yàn)?zāi)軌驒z測DNA鏈斷裂、堿性不穩(wěn)定位點(diǎn)、不完整切除修復(fù)引起的DNA鏈的斷裂，能夠制成合適細(xì)胞懸液的組織DNA損傷。與其他試驗(yàn)相比其檢測的是單細(xì)胞水平的DNA損傷，因此該試驗(yàn)敏感性較高，操作簡單，經(jīng)濟(jì)省時。
彗星實(shí)驗(yàn)（comet assay）也稱單細(xì)胞凝膠電泳試驗(yàn)（single cell gel electrophoresis.SCGE）,是一種有效評估DNA損傷的方法。其原理是器官或組織經(jīng)處理（如輻射、重金屬等）后，細(xì)胞中的DNA發(fā)生單鏈或雙鏈斷裂，經(jīng)細(xì)胞及其核膜裂解后，DNA解旋，在電場作用下，DNA 斷片遷移出細(xì)胞核，形成彗星狀的電泳圖譜。正常細(xì)胞的大分子DNA在電場作用下遷移距離較短，DNA仍保留在細(xì)胞核的范圍，形成圓形或輕微拖尾的圖譜。根據(jù)電泳緩沖液的pH值不同，可分為中性彗星實(shí)驗(yàn)（pH=8.4）和堿性彗星實(shí)驗(yàn)（pH＞13）。中性彗星實(shí)驗(yàn)主要用于檢測DNA雙鏈的斷裂損傷，堿性彗星實(shí)驗(yàn)具有更高的靈敏性，可用于檢測更少量的單鏈和雙鏈斷裂損傷。
需要注意的是，試驗(yàn)過程中的個方面，包括樣品準(zhǔn)備、電泳條件、視覺分析參數(shù)(如染色強(qiáng)度、顯微鏡光強(qiáng)度以及使用顯微鏡濾鏡和相機(jī)動態(tài)和環(huán)境條件(如背景照明)已經(jīng)被研究，可能影響DNA遷移。
圖一：DNA損傷彗星細(xì)胞
圖二：正常細(xì)胞
TG489 In Vivo Mammalian Alkaline Comet Assay，2016，OECD Guideline for the Testing of Chemicals
每個實(shí)驗(yàn)室都應(yīng)證明能夠?yàn)樗褂玫哪繕?biāo)組織獲得足夠質(zhì)量的單細(xì)胞或細(xì)胞懸浮液，從而在彗星試驗(yàn)（comet assay）中建立實(shí)驗(yàn)?zāi)芰Α?/font>匯智泰康擁有多年毒理學(xué)服務(wù)與產(chǎn)品研發(fā)經(jīng)驗(yàn)，針對不同遺傳毒性試驗(yàn)開發(fā)針對試劑盒，包括彗星試驗(yàn)試劑盒。首先通過%尾DNA的評價，對照處理組動物%尾DNA在低范圍內(nèi)。目前的數(shù)據(jù)表明,尾部DNA百分比(基于平均中位數(shù))在大鼠肝臟應(yīng)該hao不要超過6%,這將是符合JaCVAM驗(yàn)證試驗(yàn)的值和其他出版和私有數(shù)據(jù)。目前還沒有足夠的數(shù)據(jù)對其他組織的jia或可接受范圍提出建議。這并不排除合理使用其他組織。測試報告應(yīng)根據(jù)已發(fā)表的文獻(xiàn)或?qū)Ｓ袛?shù)據(jù)，對彗星試驗(yàn)在這些組織中的性能進(jìn)行適當(dāng)?shù)膶彶?。首先，在對照組中，需要一個較低的%尾DNA范圍，以提供足夠的動態(tài)范圍來檢測陽性的影響。其次，每個實(shí)驗(yàn)室都應(yīng)能夠按照表1所建議的不同方式，對直接誘變劑和促進(jìn)劑的反應(yīng)。
表一：陽性對照物質(zhì)及其部分靶組織
陽性對照物 | 靶組織 |
Ethyl methanesulfonate | 任何組織 |
Methyl methanesulfonate | 肝臟、胃、十二指腸或空腸，肺和支氣管肺泡灌洗(BAL)細(xì)胞，腎臟，膀胱，肺，睪丸和骨骼骨髓/ |
Ethyl nitrosourea | 肝胃，十二指腸或空腸 |
N-Methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine | 胃、十二指腸或空腸 |
1,2-Dimethylhydrazine 2HCl | 肝臟和腸 |
N-methyl-N-nitrosourea | 肝臟，骨髓，血液，腎臟，胃、空腸和大腦。 |
應(yīng)收集陰性對照數(shù)據(jù)，以證明陰性數(shù)據(jù)反應(yīng)的再現(xiàn)性，并確保對檢測的技術(shù)方面進(jìn)行適當(dāng)控制，或建議需要重新建立歷史控制范圍。
在實(shí)驗(yàn)室能力驗(yàn)證過程中，實(shí)驗(yàn)室應(yīng)建立歷史數(shù)據(jù)庫，建立相關(guān)組織和物種的陽性和陰性對照范圍和分布。不同的組織和不同的物種，以及不同的給藥溶媒和給藥途徑，可能會產(chǎn)生不同的%尾DNA陰性對照值。因此，建立每個組織和物種的陰性對照范圍是很重要的。實(shí)驗(yàn)室應(yīng)采用質(zhì)量控制方法，以確定其數(shù)據(jù)的變化程度，并表明該方法在其實(shí)驗(yàn)室中得到了“控制”?？赡苓€需要優(yōu)化選擇適當(dāng)?shù)年栃詫φ瘴镔|(zhì)、劑量范圍和實(shí)驗(yàn)條件(例如電泳條件)，以便發(fā)現(xiàn)微弱的影響。
對實(shí)驗(yàn)方案的任何更改都應(yīng)根據(jù)其與實(shí)驗(yàn)室現(xiàn)有歷史控制數(shù)據(jù)庫的一致性加以考慮。任何重大的不一致都應(yīng)導(dǎo)致建立新的歷史控制數(shù)據(jù)庫。
動物準(zhǔn)備：動物隨機(jī)分為對照組和實(shí)驗(yàn)組。在開始實(shí)驗(yàn)前，這些動物適應(yīng)實(shí)驗(yàn)室條件至少5天，給予標(biāo)識識別。試驗(yàn)開始時,動物的重量差異應(yīng)該不超過±20%。
樣品制備：在給動物給藥前，固體測試化學(xué)品應(yīng)溶解或懸浮在適當(dāng)?shù)?/font>溶媒中，或混合在飲食或飲用水中。液體試驗(yàn)化學(xué)品可直接加藥或在加藥前稀釋。對于吸入暴露，根據(jù)其物理化學(xué)性質(zhì)，試驗(yàn)化學(xué)品可以作為氣體、蒸汽或固體/液體氣溶膠使用。
溶媒：在使用的劑量范圍內(nèi)，溶媒不應(yīng)產(chǎn)生毒性作用，也不應(yīng)與試驗(yàn)物質(zhì)發(fā)生化學(xué)反應(yīng)。如果使用的不是常用溶媒應(yīng)提供參考數(shù)據(jù)，說明它們在測試動物、管理路線和終點(diǎn)方面的兼容性。建議在可能的情況下，應(yīng)首先考慮使用水性溶劑/溶媒。值得注意的是，一些溶劑可誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)，增加接觸部位DNA鏈斷裂的背景水平，尤其是與多藥給藥時。
陰性對照：陰性對照動物，單獨(dú)用溶媒處理，其他處理方法與治療組相同，每一次采樣時間和組織的每次檢測均納入一組陰性對照動物。陰性對照動物的尾部DNA應(yīng)在每個組織預(yù)先設(shè)定的實(shí)驗(yàn)室背景范圍和該物種的取樣時間內(nèi)。
動物數(shù)量和性別：目標(biāo)是每組提供至少5只可分析的單性別動物，或如果使用兩種動物，則每組至少提供5只可分析的單性別動物。如果人類接觸到的化學(xué)物質(zhì)可能具有性別特異性，例如某些藥物，則應(yīng)在適當(dāng)?shù)男詣e下進(jìn)行檢測。三個劑量組和同時進(jìn)行的陰性和陽性對照(每一組由5只單性別動物組成)，將需要25至35只動物。
試驗(yàn)計劃：動物應(yīng)接受為期2天或以上的每日給藥(即每隔約24小時進(jìn)行兩次或兩次以上)，并在后一次治療后的2-6小時采集一次樣本。延長劑量方案(如28天每日給藥)的樣本是可以接受的。測試化學(xué)品也可以分次使用，即，兩組給藥在同一天間隔不超過2-3小時，便于給藥量大。在這種情況下，取樣時間應(yīng)根據(jù)后一次給藥的時間來安排。
劑量水平：對無毒試驗(yàn)化學(xué)品，給藥14天以上的，大(限)劑量為1000mg /kg體重/天。給藥時間少于14天，gao劑量為2000毫克/公斤體重/天。對于特定法規(guī)所涵蓋的特定類型的測試化學(xué)品(如人類藥物)，這些限制可能有所不同。在長期給藥后表現(xiàn)出毒物動力學(xué)性質(zhì)飽和或誘導(dǎo)排毒過程而可能導(dǎo)致接觸減少的物質(zhì)，可能是劑量設(shè)定標(biāo)準(zhǔn)的例外，應(yīng)逐個進(jìn)行評估。
急性和亞急性的彗星試驗(yàn),除了大劑量(MTD,大可行的劑量,大接觸或限制劑量)遞減序列至少兩個額外的適當(dāng)間隔的劑量水平(hao相隔不到√10)應(yīng)該選擇為每個采樣時間證明劑量相關(guān)的反應(yīng)。但是，所使用的劑量水平也hao包括從大限度到產(chǎn)生很少或沒有毒性的劑量范圍。當(dāng)檢測到所有劑量水平的靶組織毒性時，建議進(jìn)一步進(jìn)行無毒劑量的研究。為了更全面地調(diào)查劑量-反應(yīng)曲線的形狀，可能需要進(jìn)行研究。
在設(shè)計試驗(yàn)時，應(yīng)考慮人體接觸的預(yù)期途徑。因此，暴露途徑，如飲食、飲水、局部、皮下、靜脈、口服(灌胃)、吸入、氣管內(nèi)或植入術(shù)可能是合理的。無論如何，應(yīng)選擇適當(dāng)?shù)穆窂揭源_保目標(biāo)組織得到充分暴露。腹腔注射通常不推薦使用，因?yàn)樗皇堑湫偷娜梭w接觸的相關(guān)途徑，只能在有特定理由的情況下使用(例如，一些陽性對照物質(zhì)，用于調(diào)查目的，或用于腹腔注射途徑所使用的某些藥物)。一次灌胃或注射液體的大容量取決于試驗(yàn)動物的大小。體積不應(yīng)超過1毫升/100克體重，但可使用2毫升/100克體重的水溶液除外。如果動物福利立法允許，使用比這更多的量是合理的。在可能的情況下，應(yīng)通過調(diào)整劑量配方的濃度來達(dá)到不同的劑量水平，以確保在所有劑量水平上的體積相對于體重是恒定的。
采樣時間：采樣時間是一個關(guān)鍵變量，因?yàn)樗怯蓽y試化學(xué)物質(zhì)在目標(biāo)組織中達(dá)到大濃度所需的時間和DNA鏈斷裂的誘導(dǎo)時間決定的，但在這些斷裂被移除、修復(fù)或?qū)е录?xì)胞死亡之前。彗星實(shí)驗(yàn)（comet assay）檢測到的一些導(dǎo)致DNA鏈斷裂的損傷持續(xù)時間可能很短，至少對于一些體外測試的物質(zhì)來說是這樣。因此，如果懷疑這種短暫的DNA損傷，應(yīng)采取措施減輕其損失，確保組織得到足夠早的采樣，可能早于下面給出的默認(rèn)時間。jia采樣時間可能是特定于物質(zhì)或路徑的采樣時間，例如，靜脈給藥或吸入給藥導(dǎo)致組織快速暴露。因此，在可能的情況下，應(yīng)根據(jù)動力學(xué)數(shù)據(jù)(如血漿或組織濃度達(dá)到峰值的時間(Tmax)或多次給藥的穩(wěn)態(tài)時間(Cmax)確定采樣時間。在缺乏動能的測量數(shù)據(jù)合適的妥協(xié)基因毒性是樣品2-6 h后給藥兩次或兩次以上,或2-6和第16 - 26 h后。關(guān)于目標(biāo)器官中毒性作用外觀的信息也可用于選擇適當(dāng)?shù)娜訒r間。
組織收集：因?yàn)樗梢匝芯空T導(dǎo)的DNA鏈斷裂(彗星)在任何組織中,組織選擇應(yīng)清晰、基于收集的原因進(jìn)行研究與任何現(xiàn)有的基因毒性、致癌性或其他測試物質(zhì)的毒性數(shù)據(jù)在調(diào)查之中。應(yīng)考慮的重要因素應(yīng)包括給藥途徑、預(yù)測的組織分布和吸收、代謝的作用以及試驗(yàn)物質(zhì)可能的作用機(jī)制。肝臟是研究頻繁、數(shù)據(jù)feng富的組織。因此，在缺乏任何背景信息的情況下，如果沒有確定感興趣的特定組織，那么對肝臟進(jìn)行取樣是合理的，因?yàn)楦闻K是異種生物代謝的主要場所，而且常常高度暴露于母體物質(zhì)和代謝物中。在某些情況下，直接接觸部位的檢查(例如，口服藥物，胃腺或十二指腸/空腸，或吸入藥物，肺)可能是相guan的。應(yīng)根據(jù)進(jìn)行測試的具體原因選擇其他或替代組織，但如果實(shí)驗(yàn)室已證明對這些組織的熟練程度和同時處理多個組織的能力，對同一動物的多個組織進(jìn)行檢查可能是有用的。
樣本制備：在后一次用測試化學(xué)品后的適當(dāng)時間，對動物實(shí)施安樂。收集選定的組織,而同時采集同一組織的一部分,放置在甲醛溶液或適當(dāng)?shù)墓潭▌┛赡芙M織病理學(xué)分析。彗星實(shí)驗(yàn)的組織被放置在切碎緩沖液中，用冷切碎緩沖液充分沖洗以去除殘留的血液，并儲存在冰冷的切碎緩沖液中，直到處理完畢。原位灌注也可進(jìn)行，如肝、腎灌注。
玻片準(zhǔn)備：單細(xì)胞懸液制備后，應(yīng)盡快(hao在1小時內(nèi))制備載玻片，但動物死亡與載玻片制備之間的溫度和時間應(yīng)嚴(yán)格控制，并在實(shí)驗(yàn)室條件下進(jìn)行驗(yàn)證。向低熔點(diǎn)瓊脂糖(通常0.5-1.0%)中加入細(xì)胞懸浮液的體積，使玻片的低熔點(diǎn)瓊脂糖百分比不應(yīng)降低到0.45%以下。jia的細(xì)胞密度將由用來給彗星評分的圖像分析系統(tǒng)決定。
細(xì)胞裂解：裂解條件也是一個關(guān)鍵變量，可能會干擾特定類型的DNA修飾(某些DNA烷基化和堿基內(nèi)收)導(dǎo)致的鏈斷裂。因此，我們建議在實(shí)驗(yàn)中對所有玻片的裂解條件盡可能保持恒定。準(zhǔn)備好后，應(yīng)在約2-8攝氏度的弱光條件下(如黃光(或防光)，將載玻片浸入冷凍溶解液中至少1小時(或過夜)，以避免暴露在可能含有紫外線成分的白光下。在此潛伏期之后，在堿液展開步驟之前，應(yīng)沖洗載玻片以除去殘留的洗滌劑和鹽。這可以用純凈水、中和緩沖液或磷酸鹽緩沖液來完成。也可以使用電泳緩沖液。這將維持電泳室的堿性條件。
解旋和電泳：將載玻片隨機(jī)放置在含有足夠電泳溶液的潛電泳裝置的平臺上，使載玻片表面*覆蓋(每次覆蓋的深度也應(yīng)一致)。在其他類型的彗星試驗(yàn)電泳裝置，即主動冷卻，循環(huán)和高容量電源，較高的解決方案覆蓋將導(dǎo)致更高的電流，而電壓保持不變。在電泳槽內(nèi)放置載玻片應(yīng)采用平衡設(shè)計，以減輕槽內(nèi)任何趨勢或邊緣效應(yīng)的影響，并盡量減少批與批之間的差異，即，在每次電泳中，研究中每個動物的載玻片數(shù)量應(yīng)相同，并應(yīng)包括來自不同劑量組(陰性和陽性對照)的樣本。應(yīng)該留給DNA解旋至少20分鐘,然后進(jìn)行電泳受控條件下,測定的靈敏度和動態(tài)范圍da化(即導(dǎo)致尾部DNA百分比的可接受水平的正面和負(fù)面的控制靈敏度da化)。DNA遷移水平與電泳時間線性相關(guān)，也與電位(V/cm)線性相關(guān)。根據(jù)JaCVAM試驗(yàn)，這可能是0.7 V/cm，持續(xù)至少20分鐘。電泳時間被認(rèn)為是一個關(guān)鍵的變量，需要設(shè)置電泳時間來優(yōu)化動態(tài)范圍。較長的電泳時間(如30或40分鐘，以提高靈敏度)通常會導(dǎo)致較強(qiáng)的陽性反應(yīng)已知的誘變。然而，較長的電泳時間也可能導(dǎo)致過度遷移的控制樣本。在每個實(shí)驗(yàn)中，電壓應(yīng)保持恒定，其他參數(shù)的變異性應(yīng)在一個較窄的指ding范圍內(nèi)。調(diào)節(jié)緩沖深度，達(dá)到要求，并在整個實(shí)驗(yàn)過程中保持。應(yīng)記錄電泳開始和結(jié)束時的電流。因此，jia條件應(yīng)在實(shí)驗(yàn)室中與所研究的每個組織有關(guān)的熟練程度的初步演示期間確定。通過展開和電泳的電泳溶液的溫度應(yīng)保持在低溫下，通常為2-10oC(10)。
電泳完成后，將載玻片在中和緩沖液中浸泡/沖洗至少5分鐘。凝膠可以被染色并標(biāo)記為“新鮮”(例如在1-2天內(nèi))，也可以被脫水以便以后的標(biāo)記(例如在染色后1-2周內(nèi))。但是，這些條件應(yīng)該在熟練程度的展示過程中得到驗(yàn)證，并且應(yīng)該為每個條件分別獲得和保留歷史數(shù)據(jù)。如果是后者，則應(yīng)將玻片浸入無水乙醇中脫水至少5分鐘，風(fēng)干，然后儲存在室溫或冰箱容器中。
測量方法：彗星應(yīng)該使用自動化或半自動化的圖像分析系統(tǒng)進(jìn)行定量評分。用合適的熒光染色劑對載玻片進(jìn)行染色，并在配備有超熒光和適當(dāng)檢測器的顯微鏡或數(shù)碼相機(jī)上進(jìn)行適當(dāng)放大(如200x)的測量。
根據(jù)彗星圖像圖譜的描述，細(xì)胞可以分為三種類型，即可分析、不可分析和“刺猬。只有可分析的細(xì)胞(明確定義的頭部和尾部，不干擾相鄰的細(xì)胞)應(yīng)該為%的尾部DNA，以避免人為干擾。刺猬的頻率應(yīng)該根據(jù)每個樣本至少150個細(xì)胞的視覺評分(因?yàn)槿鄙僖粋€清晰定義的頭部意味著它們不容易被圖像分析檢測到)來確定，并單獨(dú)記錄下來。
所有用于分析的玻片，包括陽性和陰性對照的玻片，都應(yīng)獨(dú)立編碼并進(jìn)行“盲法”評分，以便評分者不知道情況。對于每個樣本(每個動物的每個組織)，至少應(yīng)該分析150個細(xì)胞(刺猬除外)。分析150細(xì)胞/動物至少5動物每劑，提供足夠的統(tǒng)計能力。
彗星DNA鏈斷裂可以通過尾DNA %、尾長和尾力矩等獨(dú)立端點(diǎn)來測量。如果使用適當(dāng)?shù)膱D像軟件分析儀系統(tǒng)，就可以進(jìn)行這三種測量。然而，推薦將%尾DNA(也稱為%尾強(qiáng)度)用于結(jié)果的評估和解釋，并由以細(xì)胞總強(qiáng)度百分比表示的尾DNA的片段強(qiáng)度決定。
在實(shí)驗(yàn)條件下，陽性對照組的尾DNA%的與陰性對照相比具有統(tǒng)計學(xué)意義上的增加（p<0.05）時，判定試驗(yàn)系統(tǒng)有效。
在試驗(yàn)系統(tǒng)判定有效的前提下，同時滿足以下三個條件，則判定受試樣品為陽性結(jié)果：
（1） 尾DNA%的在某個單獨(dú)劑量組顯著升高；
（2） 尾DNA%隨試驗(yàn)樣品濃度升高有顯著增加趨勢；
（3） 受試物組的尾DNA%全部超過陰性背景數(shù)據(jù)范圍。
在判定陽性結(jié)果時，如僅符合上述標(biāo)準(zhǔn)中的一個或兩個，除統(tǒng)計學(xué)意義外，還應(yīng)考慮其生物學(xué)意義。
如全部不符合上述3個，則判定為陰性結(jié)果。
試驗(yàn)報告應(yīng)包括以下內(nèi)容：
（1）受試物來源如批號；
（2）測試化學(xué)品的穩(wěn)定性、使用限制日期或已知的重新分析日期;
（3）化學(xué)識別，如IUPAC或CAS名稱、CAS編號、SMILES或InChI代碼、結(jié)構(gòu)公式、純度、雜質(zhì)的化學(xué)識別(視情況和實(shí)際可行)等。
（4）多組分物質(zhì)，UVBCs和混合物, 盡可能用化學(xué)特性(見上文)、定量發(fā)生和表征化學(xué)成分的相關(guān)理化性質(zhì)。
（5）溶劑選擇的理由，已知測試化學(xué)品在溶劑/溶媒中的溶解性和穩(wěn)定性;劑量制劑的制備;對配方(例如穩(wěn)定性、均勻性、名義濃度)的分析測定;
（6）實(shí)驗(yàn)動物：所使用的品種，以及作出選擇的科學(xué)和倫理理由;動物的數(shù)目、年齡和性別;來源、居住條件、飲食、營養(yǎng)等;試驗(yàn)開始和結(jié)束時動物的體重，包括每組動物體重的范圍、平均值和標(biāo)準(zhǔn)差;
（7）測試條件：陽性和陰性控制數(shù)據(jù);測距研究的結(jié)果(如進(jìn)行);劑量水平選擇的理由;測試化學(xué)制劑的詳細(xì)資料;測試化學(xué)品的管理詳情;行政路線的基本原理;注射部位(用于皮下或靜脈注射研究);樣品制備方法，如有，組織病理學(xué)分析，特別是對彗星反應(yīng)陽性的物質(zhì);
（8組織選擇的基本原理;
如果檢測結(jié)果為陰性，則驗(yàn)證該測試化學(xué)品是否達(dá)到目標(biāo)組織或一般循環(huán)的方法;
根據(jù)膳食/飲用水試驗(yàn)化學(xué)濃度(ppm)和消耗量(如適用)計算的實(shí)際劑量(mg/kg體重/日);
飲食及水質(zhì)詳情;詳細(xì)說明實(shí)驗(yàn)方案和取樣計劃以及選擇的理由(如有毒物動力學(xué)數(shù)據(jù));-止痛、鎮(zhèn)痛方法;-安樂的方法;分離和保存組織的程序;制備單細(xì)胞懸液的方法;所有試劑的來源和批號(如有可能);評價細(xì)胞毒性的方法;電泳條件;使用染色技術(shù)；評價和測量彗星的方法;
（9）結(jié)果:對每只動物在試驗(yàn)前和整個試驗(yàn)期間進(jìn)行一般臨床觀察(如有);進(jìn)行細(xì)胞毒性試驗(yàn)的證據(jù);超過一周的研究:研究期間的個體體重，包括各組體重范圍、平均值和標(biāo)準(zhǔn)差; 劑量-反應(yīng)關(guān)系明顯;對于每個組織/動物，%的尾部DNA(或其他測量方法，如果選擇)和每張玻片的中位數(shù)，每只動物的平均值和每組的平均值;同步和歷史陰性對照數(shù)據(jù)，包括評估的每個組織的范圍、平均值/中位數(shù)和標(biāo)準(zhǔn)差;并發(fā)和歷史正控制數(shù)據(jù);對于肝臟以外的組織，使用陽性對照的劑量-反應(yīng)曲線。
（10）應(yīng)用的統(tǒng)計分析和方法;
（11）討論結(jié)果和結(jié)論
彗星試驗(yàn)試劑盒
北京匯智泰康針對堿性彗星試驗(yàn)開發(fā)彗星試驗(yàn)試劑盒，本試劑盒提供了彗星試驗(yàn)（單細(xì)胞凝膠電泳試驗(yàn)）需要的主要試劑盒耗材，省去了細(xì)胞裂解液、細(xì)胞懸液、堿性電泳液、電溶膠配制等時間，可以直接使用，大大縮短了實(shí)驗(yàn)周期；試劑盒各成分均經(jīng)過嚴(yán)格的質(zhì)量檢測和多次試驗(yàn)驗(yàn)證，符合堿性彗星試驗(yàn)要求，實(shí)驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確、可靠、重現(xiàn)性高。
堿性彗星試劑盒應(yīng)用廣泛，可進(jìn)行食品與飲用水、化學(xué)品、洗滌劑、消毒劑、食品添加劑、藥物殘留、化妝品、容器與包裝材料等多個方面的遺傳毒性檢測評價。
【產(chǎn)品說明】
本試劑盒提供了單細(xì)胞凝膠電泳試驗(yàn)（single cell gel electrophoresis,SCGE）需要的試劑和耗材。
包裝盒 | 產(chǎn)品組成 | 規(guī)格 | 數(shù)量 | 保存條件 |
堿性彗星實(shí)驗(yàn)盒 | 細(xì)胞裂解液 | 500 mL | 1 | 室溫 |
電泳膠A | 10 mL | 1 | 室溫 | |
電泳膠B | 15 mL | 1 | 4℃ | |
玻片 | 2孔 | 25 | 室溫 | |
EDTA | 12.5mL | 1 | 室溫 | |
核酸染料 | 10 ul | 1 | 4℃ | |
DMSO | 50 mL | 1 | 室溫 |
【試劑盒應(yīng)用范圍】
本試劑盒應(yīng)用范圍非常廣，可進(jìn)行食品與飲用水、化學(xué)品、洗滌劑、消毒劑、食品添加劑、藥物殘留、化妝品、容器與包裝 材料等遺傳毒理學(xué)檢測。
【傳統(tǒng)試驗(yàn)操作不足】
【試劑盒優(yōu)勢】
便捷—— 本試劑盒省去了裂解液配制時間，可以直接使用，大大縮短了實(shí)驗(yàn)周期。
準(zhǔn)確——本試劑盒各成分均經(jīng)過嚴(yán)格的質(zhì)量檢測，實(shí)驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確、可靠、重現(xiàn)性高。
穩(wěn)定—— 本試劑盒穩(wěn)定性強(qiáng)、易于運(yùn)輸和保存。
【產(chǎn)品使用說明】
干熱烤箱、低溫冰箱(-80℃) 或液氮生物容器、普通冰箱、天平(精密度0.1g和0.0001g)、雙穩(wěn)定電泳儀、電泳槽、倒置熒光顯微鏡和低速冷凍離心機(jī)等。
實(shí)驗(yàn)開始前，請根據(jù)說明書要求自行準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)所需試劑及耗材。
PBS緩沖液配制（1 L） | ||
試劑A | 12.07 g | 溶解后，先調(diào)pH至7.4，再定容至1L。 |
超純水 | 定容至1L | |
細(xì)胞懸液制備緩沖液配制（1 L） | ||
PBS緩沖液 | 900mL | 混合均勻后，4℃保存?zhèn)溆谩?/span> |
試劑B | 100mL | |
細(xì)胞裂解液配制（500 mL） | ||
試劑C | 445 mL | 使用時，先加入5 mL試劑D混勻，再加入50 mL DMSO混勻。 |
試劑D | 5 mL | |
DMSO | 50 mL | |
電泳膠準(zhǔn)備 | ||
電泳膠 | 90~100℃水浴溶膠5 min | 37 ℃保存20 min后待用。 |
堿性電泳液配制（1 L） | ||
試劑B | 5 mL | 使用時，先將試劑B、E*溶解后，再定容至1 L， 4℃保存?zhèn)溆谩?/span> |
試劑E | 8 g | |
超純水 | 定容至1L | |
注：可根據(jù)實(shí)驗(yàn)實(shí)際需求改變試劑的配制量。
（1）懸浮細(xì)胞：細(xì)胞懸浮液經(jīng)離心分離獲得。將細(xì)胞以1×105個/ml的速度懸浮于1X PBS(不含Ca+和Mg+)中。
（2）貼壁細(xì)胞：輕輕從皿底分離細(xì)胞。將細(xì)胞和培養(yǎng)基轉(zhuǎn)移到離心管中，進(jìn)行細(xì)胞計數(shù)。用1X PBS (不含Ca+和Mg+)冰洗一次。將細(xì)胞以1×105個/ml的速度懸浮于1X PBS(不含Ca+和Mg+)中。
（3）組織制備：稱取組織約0.05 g，加入制備緩沖液（含20 mmol/L EDTA-Na2的PBS）立即剪碎，沖洗。迅速研磨組織，過濾，整個過程在冰上操作。離心重懸，計數(shù)單細(xì)胞懸液密度約在為1×105～4×105個/mL。
（1）取120μL濃度為電泳膠A趁熱鋪于磨砂載玻片上，形成底膠，用蓋玻片推勻，不能有氣泡，4℃凝固20min。
（2）水平取下蓋片，取80 μL電泳膠B與20μl細(xì)胞懸液混勻，立即鋪片，加上蓋玻片，4℃凝固5min，形成第二層膠。再取80μL電泳膠B鋪在第二層膠上，4℃凝固5min，形成第三層膠。保證細(xì)胞均勻分布于每孔，每個樣本平行2孔。
（3）細(xì)胞裂解
將玻片置于平皿中，加入預(yù)冷的裂解液（裂解液：DMSO=10:1），4℃過夜裂解，裂解液平面剛好沒過玻片表面。裂解后，倒掉裂解液，用超純水清洗3次，5min/次。
4、解旋
加入預(yù)冷的解旋液（pH＞13）沒過玻片，4℃避光解旋1h。
5、電泳
預(yù)先將電泳槽置于冰盒內(nèi)，冷卻備用。將解璇后的細(xì)胞玻片置于電泳槽，倒入電泳液，調(diào)整電壓 22-24V，電流約為300Ma，電泳20min。電泳結(jié)束后，取出玻片，輕輕擦拭，去除多余液體。
超純水清洗2遍，無水乙醇脫水1遍，5min/次。37℃烘干。
染色時將稀釋過的Gene Red : Tris-Hcl 1:6000，加到玻片每孔表面，每孔100μL，避光染色30分鐘。超純水清洗3遍，去除多余液體，37℃烘干或室溫避光晾干。
拍照前關(guān)閉實(shí)驗(yàn)室光源，使用CASP1.2.3beta2彗星圖像分析軟件進(jìn)行分析，每只動物都要分析150個可分析的尾DNA含量百分率的中位數(shù)。分析過程中如遇刺猬細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記。
【注意事項】
1.本試劑盒僅供科研使用，不可用于診斷程序。
2.實(shí)驗(yàn)開始前，請自行準(zhǔn)備DMSO、超純水、手術(shù)器械、篩網(wǎng)、無水乙醇、染色液、水平電泳槽等。
3.使用組織進(jìn)行彗星試驗(yàn)時，需注意細(xì)胞制備需全程在冰上進(jìn)行，且保證在1 h內(nèi)完成鋪片。
4.電泳膠使用時需提前水浴融化，禁用微波。
5.因各實(shí)驗(yàn)室條件不同，各種激發(fā)光源所需染色液各異，本試劑盒未提供染色液。推薦的染色液包括但不局限于Gene Red、SYBR Green、SYBR Gold等。
6.清洗玻片時注意不要直接將液體傾倒至膠面，防止脫膠。
圖1 陽性對照 圖2 陰性對照
注：附圖僅供參考，以實(shí)際為準(zhǔn)。
常見問題及原因分析
1. 大鼠麻醉處死后，取肝臟樣品制備要注意肝的保存溫度及保存時間、冷凍組織以及一些其他諸如取樣所用緩沖溶液、所取肝臟組織大小等因素。取好的肝臟在制成單細(xì)胞懸液前多在冰上保存1h。一半彗星實(shí)驗(yàn)所取的肝臟大小約為0.05cm³。
2. 如需將組織冷凍，應(yīng)將組織取出后迅速并深度冷凍，直至制備單細(xì)胞懸液時取出。
3. 解旋時間會影響DNA尾百分?jǐn)?shù)，DNA尾百分?jǐn)?shù)隨著解旋時間的延長而增長。
4. 電泳時間會影響DNA尾百分?jǐn)?shù)，細(xì)胞DNA遷移隨著電泳時間的增長二增長?？梢酝ㄟ^改變電壓提高試驗(yàn)的靈敏度，推薦電壓為0.7V/cm。
5. 如有其他技術(shù)問題，可聯(lián)系匯智泰康。
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