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          植物高爾基體膜蛋白提取試劑盒
          • 植物高爾基體膜蛋白提取試劑盒
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          更新時間:2024-08-20 21:00:06

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          產(chǎn)品概述 product description 貝博® BBproExtra® 植物高爾基體膜蛋白提取試劑盒提供全套試劑,適用于從各種植物組織樣本的高爾基體膜蛋白提取。提取過程簡單方便,可在1小時內(nèi)完成。提取的膜蛋白不僅純度高,保持天然活性,而且絕少交叉污染。 本試劑盒含有的配方能夠有效溶解膜組份。本試劑盒含有的蛋白酶抑制劑混合物,阻止了蛋白酶對蛋白的降解,為提取高純度的蛋白提供了保證。 本試劑盒提取的蛋白可用于Western Blotting、蛋白質(zhì)電泳、免疫沉淀、ELISA、酶活性測定等下游蛋白研究實驗。 本試劑盒提取的蛋白為具有天然蛋白構(gòu)象的活性蛋白。 本試劑盒中不含有EDTA,與金屬螯和層析等下游應(yīng)用兼容。
          保存溫度
          2-8℃
          注意事項
          1.蛋白酶抑制劑未開蓋使用前也可以2-8℃儲存。開蓋使用后-20℃儲存。
          2.蛋白酶抑制劑在2-8℃低溫時是固體狀態(tài),從冰箱取出后恢復(fù)至室溫或37℃短時間水浴,變成液體狀態(tài)后離心至管底部再開蓋。
          3.試劑拆封后請盡快使用完!
          有效期
          一年
          檢測方法
          WB,IP等
          適用樣本
          植物
          產(chǎn)品應(yīng)用
          WB,IP等
          儀器準(zhǔn)備
          1.離心機
          2.振蕩器
          3.渦旋混勻器
          4.移液器
          5.冰箱
          6.冰盒
          試劑準(zhǔn)備
          1.PBS緩沖液
          2.蛋白定量試劑盒
          耗材準(zhǔn)備
          1.離心管
          2.吸頭
          3.一次性手套
          使用注意事項
          使用注意事項:
          ? 旋帽離心管裝的試劑在開蓋前請短暫離心,將蓋內(nèi)壁上的液體甩至管底,避免開蓋時液體灑落。
          ? 實驗過程中的所有試劑須預(yù)冷;所有器具須放-20℃冰箱預(yù)冷。整個過程須保持樣品處于低溫。
          ? 使用Dounce勻漿器勻漿,如果沒有Dounce勻漿器,用普通玻璃勻漿器勻漿也可,但是蛋白回收率會下降。
          ? 提取液C在使用前須一直置于2-8℃條件,否則下游膜蛋白提取時會導(dǎo)致不容易分層。
          ? 膜蛋白電泳時loading buffer應(yīng)該避免煮沸。
          ? 膜蛋白電泳時可以提高loading buffer的SDS含量。
          ? 離心機轉(zhuǎn)速有相對離心力(RCF,×g)和每分鐘轉(zhuǎn)速(RPM,r/min)兩種表示方式,有些離心機設(shè)置有RPM和×g顯示切換,但部分離心機沒有自動切換功能。需要用下面的公式進(jìn)行換算:
          g=r×1.118×10-5×rpm2 (r 為有效離心半徑,即從離心機軸心到離心收集管底部中心位置的長度,單位為厘米) 例如: 轉(zhuǎn)速為3000rpm,有效離心半徑為10 cm,則相對離心力(RCF,×g)為=10×1.118×10-5×30002=1006.2(×g)。

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          使用方法
          1. 提取液準(zhǔn)備:
          每500 μl冷的蛋白提取液C中加入2 μl蛋白酶抑制劑混合物,混勻后置冰上備用。
          2. 取100-200 mg新鮮植物葉片組織樣本,用PBS洗滌干凈。
          3. 用剪刀盡可能剪碎,用冷PBS洗滌兩次。
          4. 加入1000 μl冷的試劑 A,置冰上10分鐘。
          5. 用勻漿機/勻漿器充分勻漿。
          6. 勻漿液在4℃,1000×g力條件下離心5分鐘。棄沉淀,收集上清。
          7. 上清在4℃,3000×g力條件下離心10分鐘。棄沉淀,將上清吸入另一預(yù)冷的干凈離心管。
          8. 將上清在4℃,6000×g力條件下離心10分鐘。棄沉淀,收集上清。
          9. 上清在4℃,50000×g力條件下離心20分鐘。棄上清,留沉淀。
          10. 在沉淀中加入500 μl冷的試劑B,混勻。
          11. 在4℃,50000×g力條件下離心30分鐘。棄上清,收集沉淀。
          12. 在沉淀中加入400 μl蛋白提取液C,吹打混勻后,在4℃條件下振蕩15-30分鐘,至沉淀充分裂解,無明顯沉淀。
          13. 在4℃,12000×g條件下離心5分鐘。
          14. 將上清吸入另一干凈離心管,在37℃水?。庠。?5分鐘。
          15. 在37℃, 1000×g離心5分鐘。此時溶液分為2層,下層是膜蛋白約為30-50 μl。
          16. 小心移除上層,留下下層大約40 μl液體。
          17. 用50-100 μl膜蛋白溶解液D溶解下層,即可得到高爾基體膜蛋白樣品。
          18. 將上述蛋白提取物定量后分裝于-80℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯佑糜谙掠螌嶒灐?br>
          常見問題分析
          1.蛋白濃度低?
          膜蛋白豐度比較低,在條件允許的情況下,需要盡可能加大組織樣本上樣量以提高膜蛋白濃度。
          減少膜蛋白溶解液用量。

          2.用什么方法定量蛋白?
          建議用BCA法。不適合用Bradford法,因為試劑中含有干擾Bradford法的組份,導(dǎo)致定量不準(zhǔn)。如果已經(jīng)進(jìn)行過透析處理或者用脫鹽柱改換過緩沖體系,則可以用Bradford法定量。

          3.提取的蛋白具有活性嗎?
          本試劑盒不含有離子型去垢劑組份,不破壞蛋白的結(jié)構(gòu),沒有對蛋白質(zhì)之間原有的相互作用的破壞,蛋白均保持其天然構(gòu)象和活性。

          4.膜蛋白電泳沒有條帶?
          膜蛋白樣品通常濃度較低,電泳前一定要進(jìn)行蛋白定量,以保證電泳是蛋白上樣量足夠。
          膜蛋白提取好后,用溶解液充分溶解后,可以超聲處理一下,再進(jìn)行蛋白定量。
          蛋白加Loading buffer后可以不用煮沸,采用50℃保溫30分鐘。
          蛋白Loading buffer中SDS終濃度含量可以提高至3%-10%。
          有些樣品的膜蛋白含量太低,可以使用丙酮沉淀膜蛋白,再使膜蛋白溶解于上樣緩沖液中,一般可以跑出清晰的蛋白條帶。
          電泳時采用低電壓低電流電泳。
          膜蛋白豐度通常較低,有條件可以嘗試用銀染染色。

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