使用方法 | 1、細胞裂解: 組織樣本: Trizol用量:每 50-100 mg 組織加 1 ml Trizol,樣品體積不應超過 Trizol 體積的 10%。 (1)將動物或植物組織切成小塊,在液氮中磨碎或用勻漿器勻漿處理。 (2)將研磨好的組織粉末快速轉入裝有 1 ml Trizol 的 2 ml 離心管中,在渦旋振蕩器上迅速振蕩混勻,置于冰上, 待所有的樣品研磨完。 (3)裂解產(chǎn)物應呈澄清的透明粘稠液體。對于富含蛋白、脂肪或多糖物質(zhì)的組織樣品如肌肉、脂肪組織和植物結節(jié)部位等,勻漿后仍會存留有不溶物質(zhì),可于 4℃ 12,000 x g 離心 10 min,然后吸取上清至一新的離心管中。 細胞樣本: (1)貼壁細胞:吸盡培養(yǎng)液,每10cm2培養(yǎng)面積(6孔板單孔或35mm平皿)加入1ml Trizol,用加樣器吹打數(shù)次,以確保細胞完quan裂解,然后轉移至離心管中。 注:Trizol的使用量應由培養(yǎng)皿表面 積決定,而非由細胞數(shù)目決定。Trizol量不足可能導致提取的RNA中有DNA污染 。 (2)懸浮細胞:離心收集細胞,吸盡液體,每 5-10×106動植物或酵母細胞,或每 1×107細菌細胞加入 1ml Trizol, 用加樣器吹打,使其完quan裂解,然后轉移至離心管中。 注:添加 Trizol 前切勿洗滌細胞 ,以免 RNA 降解。必要時可以用勻漿器來裂解某些細菌或者酵母細胞 。 2、液相分離: (1)裂解產(chǎn)物于室溫放置5min,使核酸-蛋白復合物完quan分離。(注:此時樣品可在-80℃長期保存。 ) (2)每1ml Trizol 加入0.2ml 氯仿,蓋緊管蓋,劇烈振蕩15s,室溫放置2-3min。 (3)4℃ 12,000 x g 離心15min,樣品會分成三層:桔黃色的下層有機相,中間層和無色的上層水相。 (4)吸取含總 RNA 的上層水相至一新的離心管中,吸取水相的體積為所用 Trizol 試劑的 60%。 3、RNA 回收 (1)按照每 1 ml Trizol 的最初使用量加入 0.5 ml 異丙醇,顛倒數(shù)次混勻,室溫放置 10 min。 (2) 4℃ 12,000 x g 離心 10 min,棄除上清,可見膠狀的 RNA 沉淀。 (3)按照每 1 ml Trizol 的最初使用量加入 1 ml 75%乙醇,顛倒數(shù)次混勻,洗滌沉淀。 (4)4℃ 12,000 x g 離心 5 min,棄除上清。 (5)室溫倒置 5-10 min 晾干或真空抽干(不要使用真空干燥離心機,以免 RNA 過干,難以溶解)。 (6)加入適量(如 25ul) DEPC-ddH2O 或 TE 緩沖液,用加樣器吹打數(shù)次溶解 RNA。 (7)通過 RNA 電泳以及紫外分光光度計檢測,確定 RNA 的濃度、純度和完整性。 (8)所得的 RNA 應立即使用或適量分裝后-80℃保存,避免反復凍融。 |