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          什么是熒光定量PCR?

          來源:北京固望生物科技有限公司   2024年12月04日 19:05  

          實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Real-time qPCR)是指在PCR反應(yīng)中加入熒光基團(tuán),通過連續(xù)監(jiān)測熒光信號(hào)出現(xiàn)的先后順序以及信號(hào)強(qiáng)弱的變化,即時(shí)分析目的基因的初始量的一種PCR技術(shù)。


          一、熒光化學(xué)物質(zhì)


          Real-time qPCR所使用熒光化學(xué)物質(zhì)有熒光染料和熒光探針兩類。


          1、熒光染料


          目前主要使用的熒光染料是SYBR Green I,SYBR Green I是一種嵌入型花箐染料,在488nm(藍(lán)光)照射激發(fā)后,在522nm(綠光)具有發(fā)射高峰。


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          SYBR Green I是嵌在DNA螺旋的小溝里面的,一般用來染雙鏈DNA,在游離狀態(tài)下,SYBR Green I發(fā)出微弱的熒光,但一旦與雙鏈DNA結(jié)合后,熒光大大增強(qiáng)。因此,SYBR Green I的熒光信號(hào)強(qiáng)度與雙鏈DNA的數(shù)量相關(guān),可以根據(jù)熒光信號(hào)檢測出PCR體系存在的雙鏈DNA數(shù)量。


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          YBR Green I 與雙鏈DNA的親和力非常高,對(duì)分子生物學(xué)中常用的酶(如:Taq 酶、逆轉(zhuǎn)錄酶、內(nèi)切酶、T4連接酶等)沒有抑制作用。

          SYBR染料-DNA復(fù)合物在非極性溶液中可解離,可用乙醇沉淀的方法將SYBR Green I 從DNA中去除。SYBR Green I能夠被玻璃表面強(qiáng)烈吸收,染料溶液應(yīng)該在塑料容器中配制。

          SYBR Green I 染料法即將SYBR Green I染料添加到PCR反應(yīng)體系中時(shí),SYBR Green I能夠結(jié)合到模板和擴(kuò)增產(chǎn)物發(fā)出熒光;隨著每輪擴(kuò)增,產(chǎn)物量呈指數(shù)型上升,熒光信號(hào)也隨之累積并被儀器檢測到。


          2、熒光探針


          Real-time qPCR中常用的熒光探針為TaqMan探針,其基本原理是依據(jù)目的基因設(shè)計(jì)合成一個(gè)能夠與之特異性雜交的FRET探針,該探針的5'端標(biāo)記熒光基團(tuán),3'端標(biāo)記淬滅基團(tuán)。正常情況下兩個(gè)基團(tuán)的空間距離很近,熒光基團(tuán)發(fā)射的熒光信號(hào)被淬滅基團(tuán)吸收而不能發(fā)出熒光;PCR擴(kuò)增時(shí),引物與該探針同時(shí)結(jié)合到模板上,探針的結(jié)合位置位于上下游引物之間;當(dāng)擴(kuò)增延伸到探針結(jié)合的位置時(shí),PCR酶利用5'→3'外切酶活性將探針酶切降解,使熒光基團(tuán)和淬滅基團(tuán)分離,從而使其發(fā)出熒光。


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          熒光信號(hào)被熒光監(jiān)測系統(tǒng)接收,檢測到的熒光分子數(shù)與PCR產(chǎn)物的數(shù)量成正比,因此,根據(jù)PCR反應(yīng)體系中的熒光強(qiáng)度即可計(jì)算出初始DNA模板的數(shù)量。


          1)熒光共振能量轉(zhuǎn)移FRET


          熒光共振能量轉(zhuǎn)移是指在兩個(gè)不同的熒光基團(tuán)中,如果一個(gè)熒光基團(tuán)(供體 Donor)的發(fā)射光譜與另一個(gè)基團(tuán)(受體 Acceptor)的吸收光譜有一定的重疊,當(dāng)這兩個(gè)熒光基團(tuán)間的距離臨近至一定范圍時(shí)(一般小于100?/10nm),就可觀察到熒光能量由供體向受體轉(zhuǎn)移的現(xiàn)象,即以前一種熒光基團(tuán)的激發(fā)波長激發(fā)時(shí),可觀察到后一個(gè)基團(tuán)發(fā)射的熒光。


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          簡單地說,就是在供體基團(tuán)吸收一定頻率的光子后第一電子發(fā)生能級(jí)躍遷被激發(fā)到更高的電子能態(tài),在該電子回到基態(tài)前,通過偶極子相互作用,實(shí)現(xiàn)了能量向鄰近的受體分子轉(zhuǎn)移的過程。


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          此過程沒有光子的參與,所以是非輻射的,供體分子被激發(fā)后,當(dāng)受體分子與供體分子相距一定距離,且供體和受體的基態(tài)及第一電子激發(fā)態(tài)兩者的振動(dòng)能級(jí)間的能量差相互適應(yīng)時(shí)(同一振蕩頻率),處于激發(fā)態(tài)的供體將把一部分或全部能量轉(zhuǎn)移給受體,使受體被激發(fā),在整個(gè)能量轉(zhuǎn)移過程中,不涉及光子的發(fā)射和重新吸收。如果受體熒光量子產(chǎn)率為零,則發(fā)生能量轉(zhuǎn)移熒光熄滅;如果受體也是一種熒光發(fā)射體,則呈現(xiàn)出受體的熒光,并造成次級(jí)熒光光譜的紅移。




          ①FRET發(fā)生條件:


          a.供體分子的發(fā)射光譜應(yīng)與受體分子的激發(fā)光譜必須有顯著重疊(>30%)。


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          b.供體分子與受體分子的作用距離必須在1-10nm之間,基團(tuán)間的FRET效率可由E=1/[1+(R/R0)?]反映(R表示基團(tuán)分子之間的距離;R0表示E=50%時(shí)供體和受體分子間的距離,依賴熒光基團(tuán)發(fā)射譜和淬滅基團(tuán)激發(fā)譜的重疊程度以及基團(tuán)能量轉(zhuǎn)移的偶極子的相對(duì)方位,對(duì)于特定的供體受體對(duì)是常數(shù))。


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          FRET程度與基團(tuán)之間的空間距離緊密相關(guān),隨著距離延長,F(xiàn)RET呈顯著減弱。



          c.供體分子的發(fā)射態(tài)偶極矩與受體分子的吸收態(tài)偶極矩、以及它們的向量必須滿足一定的條件。


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          ②FRET的應(yīng)用



          a.檢測分子間相互作用:


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          b.檢測分子的折疊與構(gòu)像變化:
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          2)TaqMan探針

          ①設(shè)計(jì)原則:

          a.長度:建議15-30bp,以保證結(jié)合特異性;擴(kuò)增子長度應(yīng)小于150 bp。



          b.Tm值:68-72℃,高于引物8-10℃,可保證探針在退火時(shí)先于引物與目的片段結(jié)合,也確保探針與模板結(jié)合的穩(wěn)定性大于引物與模板結(jié)合的穩(wěn)定性,最好富含GC。

          c.5'端/3'端:探針5'端避免為G,G堿基一定程度上對(duì)5'端熒光有淬滅作用,避免報(bào)告基團(tuán)的熒光在探針切割后發(fā)生淬滅;3'端需進(jìn)行封閉,以防止在PCR中起引物的作用進(jìn)行延伸,TAMRA等基團(tuán)本身可進(jìn)行封閉。

          d.堿基分布:GC含量在30%~80%之間,一條探針中,C含量多于G,G含量高會(huì)降低反應(yīng)效率,這時(shí)可選擇互補(bǔ)的另一條鏈作為探針,避免單個(gè)核苷酸成串,如GGGGG。

          e.結(jié)合位置:探針退火時(shí),應(yīng)盡可能接近上游引物,同時(shí)又不重疊,離上游引物的3'端至少相差一個(gè)堿基;如果Taqman探針是用于檢測等位基因或突變位點(diǎn),則應(yīng)將錯(cuò)配核苷酸放在探針中間,不能放在末端。

          e.純化方式:建議選擇HPLC純化。

          ②保存:TaqMan探針必須避光保存,避免熒光基團(tuán)降解。


          3)TaqMan探針法優(yōu)點(diǎn)

          ①特異性強(qiáng):

          探針法qPCR要達(dá)到檢測的目的,不僅要上下游引物要跟模板匹配,還需要探針與模板匹配,提升了檢測的特異性。另外一方面,對(duì)于模板同源性比較高的不同目的基因的檢測和鑒定,在擴(kuò)增引物特異性沒法保證的情況下,可通過設(shè)計(jì)探針的特異性來達(dá)到特異性檢測的目的。而且特異性的探針比特異性的引物對(duì)模板序列的特異性要求要低,只要模板有幾個(gè)堿基甚至1個(gè)堿基的差異就能設(shè)計(jì)特異性的探針,而這對(duì)于擴(kuò)增引物是無法實(shí)現(xiàn)的。

          ②準(zhǔn)確性、靈敏度高:

          從探針法qPCR原理來看,擴(kuò)增引物和探針序列都匹配后擴(kuò)增的產(chǎn)物才能產(chǎn)生熒光信號(hào),這樣就確保了熒光信號(hào)是目的片段的擴(kuò)增產(chǎn)生的,排除了非特異性擴(kuò)增的影響,從而保證了檢測的準(zhǔn)確性。特別是針對(duì)一些低拷貝和低濃度的樣品,染料法qPCR隨著循環(huán)數(shù)的增加容易出現(xiàn)引物二聚體的信號(hào)干擾,導(dǎo)致檢測結(jié)果不準(zhǔn),而這種情況在探針法qPCR上不存在,因?yàn)榧词钩霈F(xiàn)引物二聚體,由于其不是目的片段,沒有探針結(jié)合位點(diǎn),所以也不會(huì)產(chǎn)生熒光信號(hào)。這也體現(xiàn)了探針法qPCR檢測低拷貝樣品的高準(zhǔn)確性和高靈敏度。

          ③可進(jìn)行多重檢測:

          在探針的5'端標(biāo)記不同的熒光修飾,則不同的探針在檢測過程中就會(huì)發(fā)出不同的熒光信號(hào)。根據(jù)此原理,可以將檢測不同目的基因或者基因型的探針標(biāo)記不同的熒光修飾,用做混合檢測,這樣就可以做多重檢測,檢測對(duì)應(yīng)的熒光信號(hào)就是檢測對(duì)應(yīng)探針的熒光定量結(jié)果,多重檢測大大節(jié)省檢測成本和檢測時(shí)間,進(jìn)一步提高了檢測的速度和適用性。


          二、定量原理


          理想的PCR反應(yīng):X=X?*2?;實(shí)際的PCR反應(yīng):X=X?*(1+Ex)?(n:擴(kuò)增反應(yīng)的循環(huán)次數(shù),X:第n次循環(huán)后的產(chǎn)物量,X?:初始模板量,Ex:擴(kuò)增效率);在擴(kuò)增產(chǎn)物達(dá)到閾值線時(shí):XCt=X?*(1+Ex)??=S (XCt:熒光擴(kuò)增信號(hào)達(dá)到閾值強(qiáng)度時(shí)擴(kuò)增產(chǎn)物的量,在閾值線設(shè)定以后,它是一個(gè)常數(shù),設(shè)為S);方程式兩邊同時(shí)取對(duì)數(shù)得: lgS=lg[X?*(1+Ex)??],整理方程式得: lgX?=-lg(1+Ex) ??+lgS。


          結(jié)論:


          ①模板DNA量越多,達(dá)到熒光閾值的循環(huán)數(shù)越少,即Ct值越小。


          ②lg濃度與循環(huán)數(shù)呈線性關(guān)系。


          a. 根據(jù)樣品擴(kuò)增達(dá)到閾值的循環(huán)數(shù)(Ct值)即可計(jì)算出樣品中所含的模板量。(相對(duì)定量)


          b. 通過已知起始拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品可作出標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)樣品Ct值,即可計(jì)算出樣品中所含的模板量。(絕對(duì)定量)


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