精子頂體形態(tài)花生凝集素熒光標記(PNA-FITC)染色試劑盒產品說明書
主要用途
精子頂體形態(tài)花生凝集素熒光標記(PNA-FITC)染色試劑是一種旨在使用熒光素標記的花生凝集素和赫斯特33258雙重熒光染色技術,分析生理性反應性或病理性退行性頂體缺失的而經典的技術方法。該技術經過精心研制、成功實驗證明的。適用于各種動物或人體精子細胞以及凍存精子細胞,以及受精時的精子細胞。產品嚴格無菌,即到即用,操作簡便,性能穩(wěn)定,熒光清晰。
技術背景
在男科學(Andrology)中,精子(spermatozoa)分析提供了精子生成(spermatogenesis)、精子壽命、以及生育能力的基礎信息。其中精子的活力(vitality)、運動能力(motility)、授精潛力(fertilizing potential)、膜結構或染色質結構完整性(integrity)、頂體反應(acrosomal reaction)功能的評價是精子分析的重要指標,也是決定人工受孕或體外授精(in vitro fertilization;IVF)的重要參數(shù)。其中頂體反應,是指當精子接近卵子實施授精時,精子頭部前半端的帽狀結構頂體,釋放出溶解酶,以便精子和卵子的膜融合。頂體反應測試是一項穩(wěn)定的精子功能參數(shù),可以用于預測受精成功率。因此頂體的結構完整性(intact)是評價的主要標志,也是不育癥和避免孕藥物研究的對象。使用熒光素標記的花生凝集素(Isothiocyano-fluoresceinated peanut Arachis hypogaea agglutinin;PNA-FITC)和赫斯特33258(Hoechst 33258)雙重熒光染色技術,是精子頂體反應分析和授精效率評價的常用的方法。首先使用赫斯特33258染色,分析精子活力,基于赫斯特33258具有有限的膜通透性特點,受到活體精子細胞(包括游動性和非游動性精子)的排斥,而容易進入死亡精子細胞。其次使用熒光素標記的花生凝集素染料,與頂體外膜糖蛋白上的半乳糖殘基(β-D-galactosyl residue)的結合,顯示完整性(未反應性unreacted)頂體,同時可以應用于受精時的精卵反應。雙染的作用,以幫助區(qū)分生理性反應性頂體缺失(loss)或病理性退行性頂體缺失。通過常用的熒光顯微鏡(激發(fā)波長488nm,散發(fā)波長530nm)便可清晰觀察到綠色頂體狀態(tài)(status)。
產品內容
保存液(Reagent A) | 毫升 |
染色液A(Reagent B) | 毫升 |
清理液(Reagent C) | 毫升 |
固著液(Reagent D) | 毫升 |
染色液B(Reagent E) | 毫升 |
產品說明書 | 1份 |
保存方式
保存在-20℃冰箱里;染色液A和B(Reagent B和E)避免光照,有效保證6月
用戶自備
碘化丙啶:用于精子細胞染色
1.5毫升離心管:用于樣品操作的容器
微型臺式離心機:用于樣品染色操作的容器
血細胞計數(shù)器:用于細胞計數(shù)
載玻片和蓋玻片:用于精子細胞爬片
(共聚焦)熒光顯微鏡:用于觀察染色的精子細胞
細胞流式儀:用于分析染色的精子細胞
實驗步驟
一、熒光顯微鏡分析
- 移取新鮮獲得的1毫升精液(48小時內)到1.5毫升離心管
- 放進37培養(yǎng)箱孵育30分鐘
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 加入xx毫升保存液(Reagent A),混勻顆粒群
- 在血細胞計數(shù)器上進行精子細胞計數(shù),并調整到2 × 107精子細胞/毫升
- 移取100微升精子細胞到新的1.5毫升離心管
- 加入xx微升染色液A(Reagent B),混勻
- 室溫下孵育5分鐘,避免光照
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 加入xx微升清理液(Reagent C),混勻顆粒群
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 重復實驗步驟12至14一次
- 加入xx微升保存液(Reagent A),混勻顆粒群
- 即刻移取20微升到潔凈的載玻片一端
- 用蓋玻片或另一個載玻片推片
- 置于空氣中涼干
- 加上xx微升預冷的固著液(Reagent D),覆蓋樣品表面
- 室溫下孵育1分鐘
- 小心抽去固著液
- 小心加上xx微升染色液B(Reagent E),覆蓋樣品表面
- 室溫下孵育20分鐘,避免光照
- 小心抽去染色液
- 小心加上xx微升清理液(Reagent C),覆蓋樣品表面
- 小心抽去清理液
- 蓋上蓋玻片或封片液
- 即刻在(共聚焦)熒光顯微鏡下觀察并計數(shù)(注意:每個視野計數(shù)200個精子)
觀察藍色熒光—染色液A(Reagent B):濾波器激發(fā)波長350nm,散發(fā)波長460nm ――可見藍色熒光,表明死亡精子細胞
觀察綠色熒光—染色液B(Reagent E):濾波器激發(fā)波長490nm,散發(fā)波長530nm ――可見綠色熒光,表明精子頂體區(qū)域
- 分析結果
- 細胞流式儀分析
- 移取新鮮獲得的1毫升精液(48小時內)到1.5毫升離心管
- 放進37培養(yǎng)箱孵育30分鐘
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 加入xx毫升保存液(Reagent A),混勻顆粒群
- 在血細胞計數(shù)器上進行精子細胞計數(shù),并調整到2 × 107精子細胞/毫升
- 移取100微升精子細胞到新的1.5毫升離心管
- (選擇步驟)加入xx微升染色液A(Reagent B),混勻
- (選擇步驟)室溫下孵育5分鐘,避免光照
- (選擇步驟)放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- (選擇步驟)小心抽去上清液
- (選擇步驟)加入xx微升清理液(Reagent C),混勻顆粒群
- (選擇步驟)放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- (選擇步驟)小心抽去上清液
- 加入xx微升染色液B(Reagent B),混勻顆粒群
- 室溫下孵育20分鐘,避免光照
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 加入xx毫升清理液(Reagent A),混勻顆粒群
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 加入200微升用戶自備的碘化丙啶(propidium iodide;PI;0.4微克/毫升),混勻顆粒群
- 室溫下孵育5分鐘,避免光照
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 加入xx毫升清理液(Reagent A),混勻顆粒群
- 放進微型臺式離心機離心5分鐘,速度為600g
- 小心抽去上清液
- 重復實驗步驟26至28一次
- 加入xx毫升清理液(Reagent A),混勻顆粒群
- 即刻進行細胞流式儀分析:觀察10000個細胞以上,200細胞/秒
激發(fā)波長 | 488nm | 488nm | 350nm |
染料 | 染色液B(Reagent E) | 用戶自備的碘化丙啶(propidium iodide;PI) | 染色液A(Reagent B) |
匹配熒光染料 | 異硫氰酸熒光素(FITC) | 藻紅蛋白(phycoerythrin;PE) |
|
熒光顏色 | 綠色 | 紅色 | 藍色 |
散發(fā)波長 | 530nm | 630nm | 460nm |
流式儀通道 | FL2 | FL3 | FL1 |
熒光增強 | 精子頂體完整性 | 精子膜完整性 | 死亡精子細胞 |
- 三色標記細胞流式儀檢測參考圖像如下(X軸:FL2—綠色熒光;Y軸:FL3—紅色熒光)
象限 | 熒光結果 | 結果分析 |
左下象限 | PI—PNA—HOUCHST— | 完整頂體和膜的活體精子細胞 |
左上象限 | PI+PNA—HOUCHST+ | 完整頂體而不完整膜的死亡精子細胞 |
右下象限 | PI—PNA+HOUCHST— | 頂體損壞而膜完整的活體精子細胞 |
右上象限 | PI+PNA+HOUCHST+ | 頂體損壞和不完整膜的死亡精子細胞 |
注意事項
- 本產品為20次操作
- 操作時須戴手套
- 樣品檢測前,建議在血細胞計數(shù)器上進行精子細胞計數(shù)
- 精子細胞計數(shù)時乘上稀釋倍數(shù)104。標準血細胞計數(shù)器(Hemocytometer)的計算方法是:
1毫米方塊的細胞計數(shù)X 104(稀釋倍數(shù))=實際細胞數(shù)/毫升
- 染色完成后,即刻進行檢測分析
- 用戶可以使用鈣離子載體A23187或Ionomycin誘導精子頂體缺失
- 用戶可以使用SYBR-14替代HOUCHST33258,進行細胞流式儀分析
- 通常使用PSA-FITC和PI雙染用于細胞流式儀分析
- 完整頂體(intact/whole acrosome)參考圖像如下:
- 頂體赤道部分(Equatorial segment)參考圖像如下:
- 本公司提供系列發(fā)育生物學相關檢測試劑產品
質量標準
- 本產品經鑒定性能穩(wěn)定
- 本產品經鑒定熒光清晰
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