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Ni NTA Beads 6FF

產(chǎn)品貨號(hào)：N30210

儲(chǔ)存條件：2-8℃

產(chǎn)品簡(jiǎn)介

LABLEAD的Ni親和層析介質(zhì)屬于一類金屬螯合介質(zhì)，以高流速瓊脂糖為基質(zhì)，以次氮基三乙酸(NTA)或亞氨基二乙酸(IDA)為配基，并鰲合金屬離子Ni²⁺而形成的一種親和層析介質(zhì)。該親和介質(zhì)不僅具有吸附容量大、選擇性好、分辨率高、超低限度的Ni產(chǎn)泄露、易于再生、成本低等優(yōu)點(diǎn)，還有利于保持產(chǎn)品的生物活性和提高產(chǎn)品的收率，從而廣泛用于生物制藥和生物工程下游蛋白質(zhì)、核酸及多肽的分離純化，尤其是zu氨酸標(biāo)記蛋白質(zhì)的高效制備。

Ni NTA Beads 6FF產(chǎn)品特點(diǎn)：

可以耐受一定濃度的還原劑、變性劑或耦合劑等苛刻條件，適用性更廣，配體更穩(wěn)定，選擇性更高；

可耐受最高0.3MPa的壓力，更穩(wěn)定，可在相對(duì)較高的流速下，實(shí)現(xiàn)對(duì)目的蛋白的純化。

產(chǎn)品性能

操作說(shuō)明

Ni NTA Beads 6FF可以在實(shí)驗(yàn)室被填裝到HiQumnR中壓層析柱中，以擴(kuò)大產(chǎn)量。將填料填裝到層析柱中，根據(jù)樣本量和填料載量選擇合適的層析柱和柱高。

1.1緩沖液準(zhǔn)備

所用緩沖液需采用高純水配制，使用前建議用0.45um濾膜過(guò)濾。

平衡緩沖液：20 mM Tris-HCI 500mM NaCl， pH=7.4

洗滌緩沖液：20 mM Tris-HCI 500mM NaCl，10 mM咪唑，pH=7.4

洗脫緩沖液：20 mM Tris-HCl 500mM NaCl，500 mM咪唑，pH=7.4

1.2樣品準(zhǔn)備

為了避免堵塞層析柱，樣品應(yīng)經(jīng)離心或微濾處理。進(jìn)料量根據(jù)介質(zhì)的載量和料液中目標(biāo)蛋白的含量計(jì)算。

1.3 樣品純化

1)平衡：用5~10CV的平衡緩沖液平衡層析柱，至流出液電導(dǎo)和pH不變(與平衡液一致)。對(duì)于結(jié)合力較強(qiáng)的帶zu氨酸標(biāo)記的蛋白質(zhì)，平衡緩沖液中可加入低濃度(20~40 mM)的咪唑。

2)進(jìn)樣：樣品緩沖液應(yīng)盡可能與平衡液一致。固體樣品可用平衡液溶解配制；低濃度樣品溶液可用平衡液透析，高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。

3)淋洗：上樣完畢后繼續(xù)用平衡緩沖液淋洗至基線。

4)洗脫：

洗脫一般有兩種方式，

一是采用競(jìng)爭(zhēng)試劑，例如咪唑(0~0.5M)、zu氨酸(0~0.05M)、氯化銨(0~2M)等將蛋白質(zhì)從柱子上置換下來(lái)；

二是減小pH值，洗脫目標(biāo)蛋白，大多數(shù)蛋白質(zhì)在pH4~6的范圍內(nèi)可被洗下來(lái)。用競(jìng)爭(zhēng)試劑咪唑或減小pH值的方法洗脫蛋白質(zhì)，金屬離子仍結(jié)合在柱子上；若用競(jìng)爭(zhēng)試劑zu氨酸或氯化銨洗脫蛋白質(zhì)，會(huì)將金屬離子和蛋白質(zhì)的復(fù)合物一起洗下來(lái)。

注：

①為了減少雜蛋白在層析柱上的吸附，可在確保目標(biāo)蛋白吸附的情況下適當(dāng)增加樣品緩沖液中的咪唑。對(duì)于包涵體蛋白，相應(yīng)的可在平衡、上樣和洗脫的緩沖液中加入8MUrea或6MGua-HCl

②洗脫緩沖液中必須加入0.15~1.0M NaCl，以消除離子交換作用。梯度洗脫最好在起始平衡液的恒定pH下進(jìn)行，可采用線性梯度或階越式梯度洗脫。

5)再生：介質(zhì)使用數(shù)次(具體與樣品特性、樣品體積、金屬離子等有關(guān))后，或者螯合其他金屬離子前，需要進(jìn)行再生處理。

首先用2~3CV的0.1M EDTA+0.5M NaCl pH7.0清洗柱子，并用2~3CV以上的0.5MNaCl溶液清洗，除去主柱上殘留的EDTA，然后再螫合相應(yīng)的金屬離子。

若有變性蛋白質(zhì)或脂類物質(zhì)在再生過(guò)程中未能有效去除，可用原位清洗(CIP)的方法除去。

2原位清洗

為了避免不同樣品間的相互干擾，或者當(dāng)介質(zhì)污染比較嚴(yán)重時(shí)(反壓增加)，需要對(duì)介質(zhì)進(jìn)行在位清洗。在位清洗前，需要預(yù)先除去介質(zhì)上螯合的金屬離子(見(jiàn)再生操作)。在位清洗時(shí)，可采用反向沖洗的方法。

1)對(duì)于以離子鍵結(jié)合的蛋白，可用2~3CV以上的2MNaCl清洗，并用3CV以上的純水沖洗。

2)對(duì)沉淀蛋白、以疏水性結(jié)合的蛋白或脂蛋白，可用1MNaOH清洗(1~2h)，并用3~10 CV平衡液和3CV以上的純水沖洗。

3)對(duì)疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白和脂類物質(zhì)，可用5~10CV的70%乙醇或30%異丙醇清洗(20min以上)，并用3~10CV的純水沖洗。

此外，也可用2CV含去污劑的堿性或酸性溶液清洗。如用0.1~0.5%的非離子去污劑+0.1M乙酸沖洗1~2h，并用5~10CV的70%乙醇沖洗去除去污劑，然后用3~10CV的純水沖洗。

重要提示：如果使用Xtrap預(yù)裝柱，可省略裝柱步驟。