目錄:優(yōu)利科（上海）生命科學有限公司>>科研試劑盒>>PCR試劑盒>> 鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)
| 供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 50T |
|---|---|---|---|
| 貨號 | YLK10008P | 應用領域 | 化工,生物產業(yè) |
| 主要用途 | 科研實驗 | 英文名稱 | Duck Plague Virus Detection Kit |
| 保存條件 | -20℃±5℃，避光保存 | 有效期 | 12個月 |
| 試劑盒說明 | 不同批號試劑不能混用 | 運輸方式 | 快遞形式 |
【產品名稱】
通用名稱：鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)
Name ：Duck Plague Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規(guī)格】50T/盒
【預期用途】
鴨瘟，又稱鴨病毒性腸炎，是由皰疹病毒科鴨瘟病毒（Duck Plague Virus, DPV） 引起的一種急性（有時呈慢性）鴨、鵝和天鵝接觸性傳染病。其特征為體溫升高，兩腿麻痹，下痢，流淚和部分病鴨頭頸腫大。食道粘膜有小出血點，并有灰黃色假膜覆蓋或潰瘍，泄殖腔粘膜充血出血水腫和假膜覆蓋。肝有不規(guī)則大小不等的出血點和壞死灶[1]。本病傳播迅速，發(fā)病率和死亡率高，嚴重威脅養(yǎng)鴨業(yè)發(fā)展。
本試劑盒適用于檢測病鴨血液、口腔偽膜及潰瘍處粘液、肝、脾、腎等組織樣品 等樣本中的鴨瘟病毒，用于鴨瘟病毒感染的輔助診斷。
【檢驗原理】
鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)對鴨瘟病毒基因組保守區(qū)設計特異性引物和探針[1-3]，用熒光 PCR 技術對鴨瘟病毒的核酸進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。
【試劑組成】
名 稱 | 規(guī) 格 |
酶液 | 50μL×1 管 |
DPV 反應液 | 500μL×2 管 |
DPV 陽性質控品 | 50μL ×1 管 |
陰性質控品 | 250μL ×1 管 |
注：
1） 不同批號試劑不能混用。
2） 試劑盒內各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標示的檢測次數(shù)。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次，有效期 12 個月。
【適用儀器】
ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列
熒光定量 PCR 檢測儀。
【標本采集】
在發(fā)病早期，無菌采集病鴨血液或刮取口腔偽膜及潰瘍處粘液；在動物死亡后，
無菌采取肝、脾、腎等組織樣品
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本
運送應采用 2~8℃冰袋運輸，嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1. 樣品處理（樣本處理區(qū)）
1.1 樣本前處理
組織樣品：每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術/剪剪碎混勻后取0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；粘液直接取 100μL 提取
1.2 DNA 提取
推薦采用公司生產的 DNA/提取試劑盒（離心柱提取
法），請按照試劑盒說明書進行操作。
2. 試劑配制（試劑準備區(qū)）
根據待檢測樣本總數(shù)，設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：
試劑 | DPV 反應液 | 酶液 |
用量（樣本數(shù)為 N） | 20μL | 1μL |
將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中，21uL/管。
3. 加樣（樣本處理區(qū)）
將步驟 1 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。
4. PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內；
4.2 設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；
熒光通道選擇： 檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye） NONE，ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光，選擇 None 即可。
4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設置：
步驟 | 循環(huán)數(shù) | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 10min | 否 |
2 | 40 cycles | 94℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定
設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現(xiàn)整體傾斜時，根據分析后圖像調節(jié)Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節(jié))，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。
5.2 結果判斷
陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線；
可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38， 且曲線有明顯的增長曲線，判定為陽性，否則為陰性；
陰性：樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。
6. 質控標準
陰性質控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；
陽性質控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。
7. 檢測方法的局限性
? 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；
? 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結果；
? 陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；
? 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；
? 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；
? 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定 量檢測不準確的結果；
? 本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
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