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          優(yōu)利科(上海)生命科學有...

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          偽狂犬病毒通用型(PRV-gH)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

          閱讀:2063      發(fā)布時間:2022-4-23
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          偽狂犬病毒通用型(PRV-gH)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)


          通用名稱:偽狂犬病毒通用型(PRV-gH)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

          Name :Pseudorabies Virus gH gene Detection Kit (Real-Time PCR Method)

          【包裝規(guī)格】50T/盒

          【預(yù)期用途】

          偽狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)又稱豬皰疹病毒Ⅰ型、傳染性延髓麻痹病毒、奇癢癥病毒、奧葉茲基氏病病毒。是引起牛、羊、豬、犬和貓等多種家畜和野生動物發(fā)熱、奇癢(豬除外)及腦脊髓炎為主要癥狀的皰疹病毒[1]。豬是偽狂犬病的唯-一自然宿主,對其危害大??芍氯焉锬肛i流產(chǎn),產(chǎn)死胎及胎兒干尸化。對初生仔豬則引起神經(jīng)癥狀,出現(xiàn)運動失調(diào),麻痹,衰竭死亡,病死率 100%。成年豬多呈隱性感染,但可引起呼吸道癥狀[2]。病豬、帶毒豬及帶毒鼠類是本病的主要傳染源,病毒主要從病豬的鼻分泌物、唾液、乳汁和尿中排除,有的帶毒豬可持續(xù)排毒一年。

          本試劑盒利用實時熒光 PCR 原理,檢測偽狂犬病毒,對偽狂犬病毒引起的疾病及其并發(fā)癥的診斷及療效評

          估有重要指導意義。

          【檢驗原理】

          本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術(shù),設(shè)計一對偽狂犬病病毒通用型特異性引物,結(jié)合一條特異性探針,用熒光 PCR 技術(shù)對偽狂犬病病毒通用型的 DNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

          【試劑組成】

          包裝規(guī)格

          50T/盒

          PRV-gH 反應(yīng)液

          500μL×2 管

          酶液

          50μL×1 管

          PRV-gH 陽性質(zhì)控品

          50μL ×1 管

          陰性質(zhì)控品

          250μL ×1 管

          說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

          【儲存條件及有效期】

          -20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次,有效期 12 個月。

          【適用儀器】

          ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

          【標本采集】

          病死或撲殺的豬,取腦、淋巴結(jié)、脾臟、肺臟等組織;待檢活豬,用棉拭子取鼻腔分泌物、唾液、乳汁等,   置于 50%甘油生理鹽水中,或用注射器取血 5mL。

          【保存和運輸】

          上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。

          【使用方法】

          1. 樣品處理(樣本處理區(qū))

          1.1 樣本前處理

          組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取 0. 5g 于研磨器中研磨,加入

          1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;分泌物棉拭子直接取 100μL 提?。谎喝⊙?100μL 提取。

          1.2 核酸提取

          推薦采用優(yōu)利科(上海)生命科學有限公司生產(chǎn)的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提取,請按照    試劑說明書進行操作。

          2. 試劑配制(試劑準備區(qū))

          根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照;反應(yīng)管數(shù)每滿 10 份,多配制 1 份),單個測試反應(yīng)液體系配制如下表:

          試劑

          PRV-gH 反應(yīng)液

          酶液

          用量(樣本數(shù)為 N)

          20μL

          1μL

          將混合好的測試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21μL/管。

          3. 加樣(樣本處理區(qū))


          將步驟 1 提取的核酸、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

          4. PCR 擴增(核酸擴增區(qū))

          4.1 將待檢測反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

          4.2 設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;

          熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請勿選擇

          ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

          4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

          步驟

          循環(huán)數(shù)

          溫度

          時間

          收集熒光信號

          1

          1 cycle

          95℃

          10min

          2

          40 cycles

          94℃

          15sec

          55℃

          30sec

          5. 結(jié)果分析判定

          5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定

          設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結(jié)果分析,當曲線出現(xiàn)整體傾斜時,根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結(jié)果。

          5.2 結(jié)果判斷

          陽性:檢測通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線;

          可疑:檢測通道 35<Ct 值≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性;

          陰性:樣本檢測結(jié)果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

          6. 質(zhì)控標準

          陰性質(zhì)控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示;

          陽性質(zhì)控品:擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,且 Ct 值≤32;以上條件應(yīng)同時滿足,否則實驗視為無效。

          7. 檢測方法的局限性

          1. 樣本檢測結(jié)果與樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān);

          2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現(xiàn)假陽性結(jié)果;

          3. 陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,會導致假陽性結(jié)果;

          4. 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結(jié)果;

          5. 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結(jié)果;

          6. 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結(jié)果;

          7. 本檢測結(jié)果僅供參考,如須確診請結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。

          【注意事項】

          1. 所有操作嚴格按照說明書進行;

          2. 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,*混勻并短暫離心;

          3. 反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

          4. 反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

          5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服;

          6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染;

          7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

          8. 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待,并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。

          【參考文獻】

          [1] 婁高明,杜偉賢.偽狂犬病流行概況及豬場防制策略[J].中國動物檢疫,1999,16(5):43-45.

          [2] 殷震,劉景華.動物病毒學[M].北京:科學出版社,1997.

          [3] 國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗檢疫總局.GB/T 35911-2018 偽狂犬病病毒熒光 PCR 檢測方法.[S].



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