【產(chǎn)品名稱(chēng)】
商品名稱(chēng)： 鵝流感病毒通用型（GIV-U）核酸檢測(cè)試劑盒（熒光 PCR 法）
Name： Goose Influenza Virus Detection Kit （Real-Time PCR Method）
【包裝規(guī)格】25T/盒、50T/盒
【預(yù)期用途】
鵝流行性感冒(goose influenza)簡(jiǎn)稱(chēng)鵝流感，是由 A 型流感病毒中的某些致病性血清亞型毒株引起的全身性或呼吸器官性急性傳染病，主要發(fā)生于 30 日齡內(nèi)的小鵝。鵝流感的發(fā)病率逐年增加，大多是因?yàn)闅夂蛲蝗蛔兓?飼養(yǎng)管理不善，小鵝受寒而感染，死亡率一般為 50%~90%。
本試劑盒適用于檢測(cè)拭子樣品、氣管、肺、腦、腸（包括內(nèi)容物）、肝、脾、腎、心等組織臟器中鵝流感病 毒 RNA，適用于鵝流感病毒感染的診斷、檢疫、檢測(cè)、監(jiān)測(cè)和流行病學(xué)調(diào)查等。
【檢驗(yàn)原理】
本試劑盒針對(duì)鵝流感病毒 M 基因高度保守區(qū)域設(shè)計(jì)特異性引物和探針，用一步法熒光 RT-PCR 技術(shù)對(duì)鵝流感病毒 RNA 進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè)，用于科研上對(duì)可疑感染病料的病原學(xué)檢測(cè)。
【試劑組成】
包裝規(guī)格25T/盒50T/盒
GIV-U 反應(yīng)液500μL×1 管500μL×2 管
酶液25μL×1 管50μL×1 管
GIV-U 陽(yáng)性質(zhì)控品50μL ×1 管50μL ×1 管
陰性質(zhì)控品250μL ×1 管250μL ×1 管
說(shuō)明：不同批號(hào)的試劑盒組分不可交互使用。
【儲(chǔ)存條件及有效期】】
-20℃±5℃，避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融次數(shù)不超過(guò) 5 次，有效期 12 個(gè)月。
【適用儀器】
ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。
【標(biāo)本采集】
拭子樣品：采集咽喉拭子時(shí)將拭子深入喉頭及上顎裂來(lái)回刮 2 次~3 次并旋轉(zhuǎn)，取分泌液；采集泄殖腔拭子時(shí)將拭子深入泄殖腔至少旋轉(zhuǎn) 3 圈并沾取少量糞便；將采樣后的拭子分別放入盛有 1.2 mL 樣品稀釋液的 2 mL 采樣管中，編號(hào)并填寫(xiě)相應(yīng)采樣單。
發(fā)病鵝可無(wú)菌采集氣管、肺、腦、腸（包括內(nèi)容物）、肝、脾、腎、心等組織臟器，裝入 15 mL 或 50 mL 帶螺口的有機(jī)材料保存管中，編號(hào)并填寫(xiě)相應(yīng)采樣單。
【保存和運(yùn)輸】
采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應(yīng)不超過(guò) 24 h；若需長(zhǎng)期保存，應(yīng)放置-70℃以下保存，凍融不超過(guò) 3 次。
【使用方法】
1.樣品處理（樣本處理區(qū)）
1.1樣本前處理
將棉拭子充分捻動(dòng)、擠干后棄去拭子；糞便，研碎的組織加 PBS 充分研磨，按照 1g 組織加 10 mL PBS 的比例配成懸液。樣品液經(jīng) 3 000 r/min 離心 10 min，取上清作為核酸檢測(cè)材料。
1.2核酸提取
推薦采用公司生產(chǎn)的核酸提取或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進(jìn)行核酸提取， 請(qǐng)按照試劑說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。
2.試劑配制（試劑準(zhǔn)備區(qū)）
根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù)，設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N（N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽(yáng)性對(duì)照；反應(yīng)管數(shù)每滿(mǎn) 10 份，多配制 1 份），每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表：
試劑GIV-U 反應(yīng)液酶液
用量19μL1μL
將混合好的測(cè)試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中，20μL /管。
3.加樣（樣本處理區(qū)）
將步驟 1 提取的核酸、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 5μL，分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中，蓋好管蓋，混勻， 短暫離心。
4.PCR 擴(kuò)增（核酸擴(kuò)增區(qū)）
4.1將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi)；
4.2設(shè)置好通道、樣品信息，反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL；熒光通道選擇：檢測(cè)通道（ReporterDye）FAM，淬滅通道
（QuencherDye）NONE，ABI 系列儀器請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光，選擇 None 即可。
4.3推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置：
步驟循環(huán)數(shù)溫度時(shí)間收集熒光信號(hào)
11 cycle50℃10min否
21 cycle95℃2min否
345 cycles95℃15sec否
60℃30sec是
5.結(jié)果分析判定
5.1結(jié)果分析條件設(shè)定（請(qǐng)參照各儀器使用說(shuō)明書(shū)進(jìn)行設(shè)置，以分析 ABI7500 儀器為例）
反應(yīng)結(jié)束后自動(dòng)保存結(jié)果，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用戶(hù)可根據(jù)實(shí)際情況自行調(diào)整，Start 值可設(shè)在 3～15、End 值可設(shè)在 5～20，使閾值線(xiàn)位于擴(kuò)增曲線(xiàn)指數(shù)期，陰性質(zhì)控品的擴(kuò)增曲線(xiàn)平直或低于閾值線(xiàn)），點(diǎn)擊 Analyze 自動(dòng)獲得分析結(jié)果。
5.2結(jié)果判斷
陽(yáng)性：檢測(cè)通道 Ct 值≤40，且曲線(xiàn)有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線(xiàn)； 陰性：樣本檢測(cè)結(jié)果 Ct 值>40 或無(wú) Ct 值。
5.3質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)
陰性質(zhì)控品：無(wú)特異性擴(kuò)增曲線(xiàn)或無(wú) Ct 值顯示；
陽(yáng)性質(zhì)控品：擴(kuò)增曲線(xiàn)有明顯指數(shù)增長(zhǎng)期，且 Ct 值≤32； 以上條件應(yīng)同時(shí)滿(mǎn)足，否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。
6.檢測(cè)方法的局限性
1.樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān)；
2.樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染，會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果；
3.陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏，會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果；
4.病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組，會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果；
5.不同的提取方法存在提取效率差異，會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果；
6.試劑運(yùn)輸，保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果；
7.本檢測(cè)結(jié)果僅供參考，如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。
【注意事項(xiàng)】
1.所有操作嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行；
2.試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化，完-全混勻并短暫離心；
3.反應(yīng)液應(yīng)避光保存；
4.反應(yīng)中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；
5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專(zhuān)用工作服；
6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行，以免交叉污染；
7.實(shí)驗(yàn)完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器；
8.試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待，并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。
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