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          鴨呼腸孤病毒(DRV)核酸檢測試劑盒說明書

          閱讀:93      發(fā)布時間:2024-11-09
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          【產(chǎn)品名稱】

          商品名稱:鴨呼腸孤病毒(DRV)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

          Name:Diagnostic Kit for duck reovirus RNA (Real-Time PCR Method)

          【包裝規(guī)格】25T/盒、50T/盒

          【預期用途】

          鴨呼腸孤病毒(reovirus of duck,DRV),包含有番鴨呼腸孤病毒(Muscovy duck reovirus,MDRV)和新型鴨呼腸孤病毒(Novel duck reovirus,NDRV)。

          本試劑盒適用于檢測全血、血漿或血清、滑膜、腱、關(guān)節(jié)和心臟等標本中鴨呼腸孤病毒(duck reovirus,DRV) 的 RNA,適用于鴨呼腸孤病毒感染的輔助診斷。其檢測結(jié)果僅供參考。

          【檢驗原理】

          本試劑盒用一對鴨呼腸孤病毒特異性引物,結(jié)合一條特異性熒光探針,用一步法熒光 RT-PCR 技術(shù)對禽呼腸孤病毒 RNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染病料的病原學診斷。

          【試劑組成】

          包裝規(guī)格25T/盒50T/盒

          DRV 反應液500μL×1 管500μL×2 管

          酶液25μL×1 管50μL×1 管

          DRV 陽性質(zhì)控品50μL ×1 管50μL ×1 管

          陰性質(zhì)控品250μL ×1 管250μL ×1 管

          說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用

          【儲存條件及有效期】

          -20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融不超過 5 次,有效期 12 個月。

          【適用儀器】

          ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

          【標本采集】

          病死或撲殺禽,取滑膜、腱、關(guān)節(jié)或心臟組織;待檢活禽,用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。

          【保存和運輸】

          采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應不超過 24 h;若需長期保存,應放置-70℃以下保存,凍融不超過 3 次。

          【使用方法】

          1.樣品處理(樣本處理區(qū))

          1.1樣本前處理

          每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;全血樣品待血凝后取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

          1.2核酸提取

          推薦采用優(yōu)利科(上海)生命科學有限公司生產(chǎn)的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提取,   請按照試劑說明書進行操作。

          2.試劑配制(試劑準備區(qū))

          根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照;反應管數(shù)每滿 10 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

          試劑DRV 反應液酶液

          用量19μL1μL

          將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,20μL/管。

          3.加樣(樣本處理區(qū))

          將步驟 1 提取的核酸、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。

          4.PCR 擴增(核酸擴增區(qū))

          4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內(nèi);

          4.2設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;

          熒光通道選擇:檢測通道(ReporterDye)FAM,淬滅通道(QuencherDye)NONE,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX

          參比熒光,選擇 None 即可。

          4.3推薦循環(huán)參數(shù)設置:


          步驟循環(huán)數(shù)溫度時間收集熒光信號

          11 cycle50℃10min

          21 cycle95℃2min

          345 cycles95℃15sec

          60℃30sec

          5.結(jié)果分析判定

          5.1結(jié)果分析條件設定(請參照各儀器使用說明書進行設置,以分析 ABI7500 儀器為例)

          反應結(jié)束后自動保存結(jié)果,根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用戶可根據(jù)實際情況自行調(diào)整,Start 值可設在 3~15、End 值可設在 5~20,使閾值線位于擴增曲線指數(shù)期,陰性質(zhì)控品的擴增曲線平直或低于閾值線),點擊 Analyze 自動獲得分析結(jié)果。

          5.2結(jié)果判斷

          陽性:檢測通道 Ct 值≤40,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線; 陰性:樣本檢測結(jié)果 Ct 值>40 或無 Ct 值。

          5.3質(zhì)控標準

          陰性質(zhì)控品:無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示;

          陽性質(zhì)控品:擴增曲線有明顯指數(shù)增長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

          6.檢測方法的局限性

          1.樣本檢測結(jié)果與樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān);

          2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現(xiàn)假陽性結(jié)果;

          3.陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,會導致假陽性結(jié)果;

          4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結(jié)果;

          5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結(jié)果;

          6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結(jié)果;

          7.本檢測結(jié)果僅供參考,如須確診請結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。

          【注意事項】

          1.所有操作嚴格按照說明書進行;

          2.試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化,完-全混勻并短暫離心;

          3.反應液應避光保存;

          4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

          5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服;

          6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染;

          7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

          8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。

          提供商

          優(yōu)利科(上海)生命科學有限公司

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