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          技術文章

          成纖維細胞排除法操作流程

          閱讀:804          發(fā)布時間:2017-3-7

          1.原代細胞機械刮除法:

          是用不銹鋼絲末端插有橡膠刮頭(用膠塞剪成三角形插以不銹鋼絲)、或裹少許脫脂棉制成,裝入試管中高壓滅菌后備用(也可用特制電熱燒灼器刮除)。刮除程序為:

          (1)標記:鏡下觀察,用不脫色筆在培養(yǎng)瓶皿的背面圈下生長腫瘤細胞的部位;

          (2)刮除:棄掉培養(yǎng)液,把無菌膠刮伸入瓶皿中,肉眼或顯微鏡窺視下,刮除無標記空間;

          (3)用Hanks液沖洗一兩次,洗除被刮掉的細胞;

          (4)注入培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),如發(fā)現(xiàn)仍有成纖維細胞殘留,可重復刮除至*除掉為止

          2.反復貼壁法:

          根據(jù)腫瘤細胞比成纖維細胞貼壁速度慢的特點,并結合使用不加血清的營養(yǎng)液,把含有兩類細胞的細胞懸液反復貼壁,使兩類細胞相互分離,操作方法與傳代相同。

          (1)待原代細胞生長達一定數(shù)量后,倒出舊培養(yǎng)液,用胰酶消化后,Hanks 沖洗2次,加入不含血清的培養(yǎng)液,吹打制成細胞懸液;

          (2)取編號為此A、B、C三個培養(yǎng)瓶;首先把懸液接種入A培養(yǎng)瓶中。置溫箱中靜止培養(yǎng)5~20分鐘后,輕輕傾斜培養(yǎng)瓶,讓液體集中瓶角后慢慢吸出全部培養(yǎng)液,再接種入B培養(yǎng)瓶中后;向A瓶中補充少許*培養(yǎng)液置溫箱中繼續(xù)培養(yǎng);

          (3)培養(yǎng)B瓶中細胞5~20分鐘后,接處理A的方法,把培養(yǎng)液注入C培養(yǎng)瓶中;再向B瓶中補加*培養(yǎng)基。

          當三個瓶內(nèi)都含有培養(yǎng)液后,均在溫箱中繼續(xù)培養(yǎng)。如操作成功,次日觀察可見A瓶主要為成纖維細胞,B瓶兩類細胞相雜,C瓶可能主要為癌細胞。必要時可反復處理多次,直至癌細胞純化為止。

          3.消化排除法:

          此法曾用于乳癌細胞的培養(yǎng),具體程序是:

          (1)先是用0.5%胰蛋白酶和0.02%EDTA(1:1)混合液漂洗培養(yǎng)細胞一次,然后再換成新的混合液繼續(xù)消化,并在倒置顯微鏡下窺視和不時搖動培養(yǎng)瓶,到半數(shù)細胞脫落下來后,便立即停止消化;

          (2)把消化液吸入離心管中,離心去上清,吸入另瓶中,加培養(yǎng)液置溫箱中培養(yǎng);向原瓶內(nèi)也補加新的培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。用此法處理后,成纖維細胞比腫瘤細胞易先脫落。經(jīng)過幾次反復處理,可能把成纖維細胞除凈。

          4.膠原酶消化法:

          本法是利用成纖維細胞對膠原酶較為敏感的特點,通過消化進行選擇。

          (1)可用0.5mg/ml的膠原酶消化處理,邊消化邊在倒置顯微鏡下窺視,當發(fā)現(xiàn)成纖維細胞被除掉后,即終止消化;

          (2)用Hanks洗滌處理一次后,更換新培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng),可獲純凈腫瘤細胞。如成纖維細胞未被除凈,可再次重復。

          5.其它方法:

          有人發(fā)現(xiàn)聚丙烯酰胺有抑制成纖維細胞生長的作用;也有人用聚蔗糖制備成比重1.025~1.085的密度梯度離心液,加入細胞懸液后,在23℃中800g離心 10分種。在比重1.025~1.050層為成纖維細胞,在比重1.050~1.085層為上皮細胞,再經(jīng)過分離進行培養(yǎng)。zui近也有人應用特殊化學物如SOD抑制成纖維細胞生長的方法。

          選用上述任何一種方法,都需進行試驗,取得必要經(jīng)驗,找出適合的條件,原代細胞才能獲得好的效果。

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