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操作步驟
熒光定量PCR 實驗步驟:
①取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。
②兩相分離 每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后,15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配于水相中。水相上層的體積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。
③RNA沉淀 將水相上層轉移到一干凈無RNA酶的離心管中。加等體積異丙醇混合以沉淀其中的RNA,混勻后15到30℃孵育10分鐘后,于4℃下12000rpm 離心10分鐘。此時離心前不可見的RNA沉淀將在管底部和側壁上形成膠狀沉淀塊。
④RNA清洗 移去上清液,每1mlTRIZOL試劑裂解的樣品中加入少1ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPCH2O配制),清洗RNA沉淀?;靹蚝?,4℃下7000rpm離心5分鐘。
⑤RNA干燥 小心吸去大部分乙醇溶液,使RNA沉淀在室溫空氣中干燥5-10分鐘。
⑥溶解RNA沉淀 溶解RNA時,先加入無RNA酶的水40μl用槍反復吹打幾次,使其*溶解,獲得的RNA溶液保存于-80℃待用。
1)紫外吸收法測定
先用稀釋用的TE溶液將分光光度計調零。然后取少量RNA溶液用TE稀釋(1:100)后,讀取其在分光光度計260nm和280nm處的吸收值,測定RNA溶液 濃度和純度。
① 濃度測定
A260下讀值為1表示40 μg RNA/ml。樣品RNA濃度(μg/ml)計算公式為:A260 ×稀釋倍數(shù)× 40 μg/ml。具體計算如下:
RNA溶于40 μl DEPC水中,取5ul,1:100稀釋495μl的TE中,測得A260 = 0.21
RNA 濃度= 0.21 ×100 ×40 μg/ml = 840 μg/ml 或 0.84 μg/μl
取5ul用來測量以后,剩余樣品RNA為35 μl,剩余RNA總量為:
35 μl × 0.84 μg/μl = 29.4 μg
②純度檢測
RNA溶液的A260/A280的比值即為RNA純度,比值范圍1.8到2.1。
2)變性瓊脂糖凝膠電泳測定
①制膠
1g瓊脂糖溶于72ml水中,冷卻60℃,10 ml的10× MOPS電泳緩沖液和18 ml的37% 甲醛溶液(12.3 M)。
10×MOPS電泳緩沖液
濃度 成分
0.4M MOPS,pH 7.0
0.1M 乙酸鈉
0.01M EDTA
灌制凝膠板,預留加樣孔少可以加入25 μl溶液。膠凝后取下梳子,將凝膠板放入電泳槽內,加足量的1×MOPS電泳緩沖液覆蓋膠面幾個毫米。
②準備RNA樣品
取3μgRNA,加3倍體積的甲醛上樣染液,加EB于甲醛上樣染液中終濃度為10μg/ml。加熱70℃孵育15分鐘使樣品變性。
③電泳
上樣前凝膠須預電泳5min,隨后將樣品加入上樣孔。5–6V/cm電壓下2h,電泳溴酚蘭指示劑進膠少2–3cm。
④紫外透射光下觀察并拍照
28S和18S核糖體RNA的帶非常亮而濃(其大小決定于用于抽提RNA的物種類型),上面一條帶的密度大約是下面一條帶的2倍。還有可能觀察到一個更小稍微擴散的帶,它由低分子量的RNA(tRNA和5S核糖體RNA)組成。在18S和28S核糖體帶之間可以看到一片彌散的EB染色物質,可能是由mRNA和其它異型RNA組成。RNA制備過程中如果出現(xiàn)DNA污染,將會在28S核糖體RNA帶的上面出現(xiàn),即更高分子量的彌散遷移物質或者帶,RNA的降解表現(xiàn)為核糖體RNA帶的彌散。用數(shù)碼照相機拍下電泳結果。
①反應體系
序號 | 反應物 | 劑量 |
1 | 逆轉錄buffer | 2μl |
2 | 上游引物 | 0.2μl |
3 | 下游引物 | 0.2μl |
4 | dNTP | 0.1μl |
5 | 逆轉錄酶MMLV | 0.5μl |
6 | DEPC水 | 5μl |
7 | RNA模版 | 2μl |
8 | 總體積 | 10μl |
輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
②混合液在加入逆轉錄酶MMLV 之前先70℃干浴3分鐘,取出后立即冰水浴管內外溫度一致,然后加逆轉錄酶0.5μl,37℃水浴60分鐘。
③取出后立即95℃干浴3分鐘,得到逆轉錄終溶液即為cDNA溶液,保存于-80℃待用。
管家基因(β-actin)實時定量PCR
①β-actin陽性模板的標準梯度制備 陽性模板的濃度為10,反應前取3μl按10倍稀釋(加水27μl并充分混勻)為10,依次稀釋10、10、10、10、10、10,以備用。
②反應體系如下:
標準品反應體系
序號 | 反應物 | 劑量 |
1 | SYBR Green 1 染料 | 10μl |
2 | 陽性模板上游引物F | 0.5μl |
3 | 陽性模板下游引物R | 0.5μl |
4 | dNTP | 0.5μl |
5 | Taq酶 | 1μl |
6 | 陽性模板DNA | 5μl |
7 | ddH2O | 32.5μl |
8 | 總體積 | 50μl |
輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
管家基因反應體系:
序號 | 反應物 | 劑量 |
1 | SYBR Green 1 染料 | 10μl |
2 | 內參照上游引物F | 0.5μl |
3 | 內參照下游引物R | 0.5μl |
4 | dNTP | 0.5μl |
5 | Taq酶 | 1μl |
6 | 待測樣品cDNA | 5μl |
7 | ddH2O | 32.5μl |
8 | 總體積 | 50μl |
輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
③制備好的陽性標準品和檢測樣本同時上機,反應條件為:93℃2分鐘,然后93℃ 1分鐘,55℃ 2分鐘,共40個循環(huán)。
①針對每一需要測量的基因,選擇一確定表達該基因的cDNA模板進行PCR反應。
反應體系:
序號 | 反應物 | 劑量 |
1 | 10×PCR緩沖液 | 2.5 ul |
2 | MgCl2溶液 | 1.5 ul |
3 | 上游引物F | 0.5 ul |
4 | 下游引物R | 0.5 ul |
5 | dNTP混合液 | 3 ul |
6 | Taq聚合酶 | 1 ul |
7 | cDNA | 1 ul |
8 | 加水總體積為 | 25ul |
輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
35個PCR循環(huán)(94℃1分鐘;55℃1分鐘;72℃1分鐘); 72℃延伸5分鐘。
②PCR產物與 DNA Ladder在2%瓊脂糖凝膠電泳,溴化乙錠染色,檢測PCR產物是否為單一特異性擴增條帶。
③將PCR產物進行10倍梯度稀釋: 設定PCR產物濃度為1×10,依次稀釋10、10、10、10、10、10幾個濃度梯度。
①所有cDNA樣品分別配置實時定量 PCR反應體系。
體系配置如下:
序號 | 反應物 | 劑量 |
1 | SYBR Green 1 染料 | 10 ul |
2 | 上游引物 | 1ul |
3 | 下游引物 | 1ul |
4 | dNTP | 1ul |
5 | Taq聚合酶 | 2ul |
6 | 待測樣品cDNA | 5ul |
7 | ddH2O | 30ul |
8 | 總體積 | 50 ul |
輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
②將配制好的PCR反應溶液置于Realtime PCR儀上進行PCR擴增反應。反應條件為:93℃2分鐘預變性,然后按93℃ 1分鐘,55℃1分鐘,72℃1分鐘,共40做個循環(huán),后72℃7分鐘延伸。
引物設計軟件:Primer Premier 5.0,并遵循以下原則:引物與模板的序列緊密互補;引物與引物之間避免形成穩(wěn)定的二聚體或發(fā)夾結構;引物不在模板的非目的位點引發(fā)DNA 聚合反應(即錯配)。
各樣品的目的基因和管家基因分別進行Realtime PCR反應。PCR產物與 DNA Ladder在2%瓊脂糖凝膠電泳,GoldView染色,檢測PCR產物是否為單一特異性擴增條帶。
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