實驗原理
    瓊脂糖凝膠電泳常用于分離、鑒定 DNA、RNA 分子混合物，以瓊脂凝膠作為支持物，利用 DNA 分子在電場中時的電荷效應(yīng)和分子篩效應(yīng)，達(dá)到分離混合物的目的。DNA 分子在高于其等電點的溶液中帶負(fù)電，在電場中由陰極向陽極運動。在一定的電場強(qiáng)度下，忽略DNA分子攜帶的電荷，DNA 分子的遷移速度取決于分子篩效應(yīng)，即分子本身的大小和構(gòu)型是主要的影響因素。DNA 分子的遷移速度與相對分子量成反比。
    不同構(gòu)型的 DNA 分子的遷移速度不同。如環(huán)形 DNA 分子樣品，其中有三種構(gòu)型的分子：超螺旋分子（cccDNA）、開環(huán)分子(ocDNA)、和線形 DNA 分子(IDNA)。這三種不同構(gòu)型分子進(jìn)行電泳時的遷移速度大小順序為:cccDNA＞IDNA＞ocDNA。
    核酸電泳通常使用瓊脂糖凝膠和聚丙烯酰胺凝膠兩種介質(zhì)。瓊脂糖是一種聚合鏈線性分子；聚丙烯酰胺凝膠由丙烯酰胺（Acr）在 N,N,N′-四甲基乙二胺（TEMED）和過硫酸銨（AP）的催化下聚合形成長鏈，并通過交聯(lián)劑 N,N′-亞甲雙丙烯酰胺（Bis）交叉連接而成。瓊脂糖凝膠適合分離200bp至近50kb的DNA片段，而聚丙烯酰胺凝膠對于小片段（5bp-500bp）的分離效果很好，且分辯力。選擇不同濃度的凝膠，可以分離丌同大小范圍的 DNA 分子。電場強(qiáng)度愈大，帶電顆粒的運動赹快。但凝膠的有效分離范圍隨著電壓增大而減小，所以電泳時一般采用低電壓，不超過 6V/cm。而對于大片段電泳，可以選擇 0.5-1.0V/cm 電泳過夜。如果選擇高電壓電泳，可使用聚丙烯酰胺凝膠。
    核酸電泳常采用 TAE、TBE、TPE 三種緩沖系統(tǒng)。TAE 價格低廉，但緩沖能力低。TPE 在進(jìn)行 DNA 回收時，會使 DNA 污染磷酸鹽，影響后續(xù)反應(yīng)。所以綜合考慮，多采用 TBE 緩沖液。
    核酸電泳中常用的染色劑是溴化乙錠（EB）。溴化乙錠是一種扁平分子，可以嵌入核酸雙鏈的配對堿基之間。在紫外線照射 BE-DNA 復(fù)合物時，通過發(fā)光指示核酸的位置。由于EB有較強(qiáng)的揮發(fā)性和毒性，現(xiàn)在大多選擇EB替代品進(jìn)行試驗，比較常用的有g(shù)elred，goldview，ybr-green等，但是整體效果都若于傳統(tǒng)的EB。
材料、試劑及器具
1、材料
合適的Marker（分子量標(biāo)準(zhǔn)）；DNA 樣品
2、試劑
加樣緩沖液（6x或10x）；瓊脂糖；溴化乙錠（EB）。
3、器具
（1）電泳系統(tǒng)：電泳儀、水平電泳槽、制膠板等。
（2）凝膠成像系統(tǒng)或紫外透射儀。
實驗過程
1、按所分離的 DNA 分子的大小范圍，選擇合適的比例的凝膠，稱取適量的瓊脂粉，放到一錐形瓶中，加入適量的 TBE電泳緩沖液。然后置微波爐加熱至瓊脂粉溶化，溶液透明。稍搖勻，得膠液。待膠液卻至 60℃左右，在膠液內(nèi)加入適量的比例的溴化乙錠液。
2、水平放置膠槽，在一端插好梳子，在槽內(nèi)緩慢倒入已況至 60℃左右的膠液，使之形成均勻水平的膠面。
3、待膠凝固后，小心拔起梳子，使加樣孔端置陰極段放進(jìn)電泳槽內(nèi)。
4、在槽內(nèi)加入TBE電泳緩沖液，至液面覆蓋過膠面。
5、把待檢樣品，按合適比例與加樣緩沖液混勻，用移液槍加至凝膠的加樣孔中。
6、接通電泳儀和電泳槽，并接通電源，調(diào)節(jié)合適電壓，穩(wěn)壓輸出，開始電泳。
7、觀察溴酚蘭的帶（藍(lán)色）的位置。當(dāng)其移動至約凝膠長2/3處時，可停止電泳。
8、在紫外透視儀的樣品臺上重新鋪上一張保鮮膜，趕去氣泡平鋪，然后把凝膠放在上面。關(guān)上樣品室外門，打開紫外燈（360nm 或 254nm），通過觀察孔進(jìn)行觀察。