人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞 (hiPSC) 是通過基因編輯技術(shù)（如 CRISPR-Cas9）對已經(jīng)高度分化的人體細(xì)胞進(jìn)行重新逆分化得到的多能干細(xì)胞。傳統(tǒng)的hiPSC細(xì)胞系構(gòu)建與培養(yǎng)過程操作復(fù)雜、耗材昂貴且費時費力。特別是對于異質(zhì)編輯細(xì)胞池中構(gòu)建的克隆hiPSC系的培養(yǎng)，受到了傳統(tǒng)細(xì)胞培養(yǎng)方法的桎梏，很難構(gòu)建一個高效的hiPSC構(gòu)建與培養(yǎng)工作流程。此外，現(xiàn)有的單細(xì)胞分離和培養(yǎng)方法通常對細(xì)胞的處理條件要求苛刻，操作步驟繁瑣，無法充分保證單克隆性。

為應(yīng)對hiPSC細(xì)胞系構(gòu)建與培養(yǎng)過程中的諸多挑戰(zhàn)，iotaSicences公司采用了以GRID技術(shù)為核心的高度自動化的單細(xì)胞可視化培養(yǎng)系統(tǒng)isoCell，構(gòu)建了用于 hiPSC細(xì)胞系培養(yǎng)的平臺。該平臺采用全自動化流程，操作條件溫和，對單細(xì)胞無損傷，具有高通量、自動化、高成活率等優(yōu)勢，可確保分選出的細(xì)胞100%為單細(xì)胞。柏林醫(yī)學(xué)大學(xué)多能干細(xì)胞和類器官研究中心的Harald Stachelscheid團(tuán)隊使用isoCell在Stem Cell Research期刊上發(fā)表了三篇構(gòu)建不同功能的hiPSC細(xì)胞系的科研應(yīng)用文章，展示了isoCell在hiPSC細(xì)胞系構(gòu)建和培養(yǎng)方面的優(yōu)勢。

圖1 單細(xì)胞可視化培養(yǎng)系統(tǒng)isoCell實物圖

1. 以isoCell為核心的hiPSC細(xì)胞培養(yǎng)平臺

isoCell系統(tǒng)組成的細(xì)胞培養(yǎng)平臺是基于GRID技術(shù)的高度自動化的實驗平臺。GRID是指在細(xì)胞培養(yǎng)基上采用FC40液體分隔出的網(wǎng)格小室，體積小（耗材少），光學(xué)透明度高，可以容納細(xì)胞在內(nèi)生長，且各個小室之間物質(zhì)不流通。isoCell系統(tǒng)配備了熒光和成像系統(tǒng)，用于在整個克隆工作流程中記錄 GRID 小室的圖像（見下圖）。

圖2 GRID實物圖

isoCell 可自動執(zhí)行所有液體處理步驟，包括構(gòu)建 GRID、將單細(xì)胞注射到GRID小室中以及交換培養(yǎng)基和收獲單克隆集落，在整個工作流程中自動檢測每一個 GRID 小室，并確保每一個單克隆hiPSC細(xì)胞系來源于單個細(xì)胞。

圖3  isoCell操作流程圖

2. 生成具有 SLC16A2:G401R 或 SLC16A2 敲除的 iPSC系

X染色體相關(guān)的AHDS綜合征的發(fā)病特點是由編碼甲狀腺激素轉(zhuǎn)運蛋白MCT8（單羧酸轉(zhuǎn)運蛋白8）的SLC16A2基因突變引起精神運動發(fā)育嚴(yán)重受損。

該團(tuán)隊使用CRISPR/Cas9技術(shù)（靶向 SLC16A2 的外顯子3）將AHDS患者錯義變體G401R和新型敲除缺失變體 (F400Sfs*17) 引入男性健康供體的hiPSC系（BIHi001-B）。通過isoCell培育成功地獲得了SLC16A2基因敲除的hiPSC單克隆細(xì)胞系（BIHi001-B-7）和（BIHi001-B-8），并證明了這些新細(xì)胞系在模擬 MCT8 缺陷對人類神經(jīng)發(fā)育的影響方面的實用性。文章以Generation of iPSC lines with SLC16A2:G401R or SLC16A2 knock out為題發(fā)表于Stem Cell Research期刊上。

圖4  WB驗證SLC16A2 敲除的hiPSC系無法表達(dá)SLC16A2蛋白

3. 生成 THRB-GS(E125G_G126S) 和 THRB-KO 人類 iPSC 系以研究非典型甲狀腺激素信號傳導(dǎo)

THRB是一種依賴甲狀腺激素 (TH) 結(jié)合來調(diào)節(jié)基因表達(dá)的核受體。相同的受體也可以介導(dǎo)細(xì)胞質(zhì)中信號通路的激活。目前尚無法區(qū)分這兩種機制中的哪一種是造成 TH 生理效應(yīng)的原因。

該團(tuán)隊結(jié)合基因編輯與isoCell的單細(xì)胞培養(yǎng)基技術(shù)，成功建立了一種在 THRB DNA 結(jié)合域中具有兩個突變 (E125G_G126S) 的hiPSC 細(xì)胞系（BIHi001-B-2/3），該突變消除了THRB的核受體作用，因此可以用該細(xì)胞系專門研究THRB的信號通路激活作用。該團(tuán)隊還生成了 THRB 敲除細(xì)胞系（BIHi001-B-6）以消除所有 THRB 效應(yīng)。通過比較WT結(jié)果和這兩種細(xì)胞系，將甲狀腺激素的影響歸因于潛在的機制。文章以Generation of THRB-GS(E125G_G126S) and THRB-KO human iPSC lines to study noncanonical thyroid hormone signalling為題發(fā)表于2024年2月的Stem Cell Research期刊上。

圖5  基因測序驗證BIHi001-B-2/3和BIHi001-B-6細(xì)胞系敲除或突變了對應(yīng)基因

4. 使用 CRISPR-Cas9 生成了兩個 BAX/BAK 雙敲除人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞系 (iPSC)

腦缺血損傷很多是由于腦缺血狀態(tài)下細(xì)胞凋亡導(dǎo)致的。Bcl-2基因相關(guān)的X 蛋白 (BAX) 和BCL2 拮抗因子/殺手1（BAK）是 BCL2 家族的兩個促凋亡因子，BAX 和BAK是線粒體凋亡的執(zhí)行基因，與細(xì)胞凋亡密切相關(guān)。

該團(tuán)隊使用 CRISPR-Cas9技術(shù)構(gòu)建了兩個 BAX/BAK 雙敲除人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞BIHi005-A-17和BIHi250-A-1，并通過isoCell培養(yǎng)獲得了對應(yīng)的hiPSC單克隆細(xì)胞系。所得細(xì)胞系核型正常，具有典型的形態(tài)并表達(dá)未分化狀態(tài)的典型標(biāo)記，并通過基因技術(shù)驗證了細(xì)胞系已敲除BAK基因。在后續(xù)的研究中，研究人員就可以將該BAX/BAK 雙敲除的hiPSC細(xì)胞系廣泛應(yīng)用于腦缺血等細(xì)胞凋亡相關(guān)領(lǐng)域的發(fā)病機制與治療干預(yù)機制研究中。文章以Generation of two human induced pluripotent stem cell lines with BAX and BAK1 double knock-out using CRISPR/Cas9為題發(fā)表于2024年4月的Stem Cell Research期刊上。

圖6 通過基因測序及WB驗證BIHi005-A-17和BIHi250-A-1以敲除BAK與BAX基因

5. 結(jié)論

以isoCell構(gòu)建的hiPSC細(xì)胞培養(yǎng)平臺可以對hiPSC細(xì)胞進(jìn)行全自動化且溫和地單細(xì)胞培養(yǎng)。通過isoCell有的GRID小室網(wǎng)格技術(shù)與可視化分選相結(jié)合，可以確保每一個單克隆hiPSC細(xì)胞系均來自單個細(xì)胞，且節(jié)省培養(yǎng)耗材。

isoCell的培養(yǎng)條件溫和，在以上案例中協(xié)助科研人員構(gòu)建了多個基因改造hiPSC單克隆細(xì)胞系，成活率高。

單細(xì)胞可視化培養(yǎng)系統(tǒng)isoCell的優(yōu)勢：

? 全自動化流程

? 操作條件溫和，對單細(xì)胞無損傷

? 全培養(yǎng)、分析流程可追蹤

? 單細(xì)胞率高達(dá)100%

? 單克隆細(xì)胞系構(gòu)建成活率高

? 結(jié)構(gòu)緊湊，體積小，節(jié)省耗材

單細(xì)胞可視化分選培養(yǎng)系統(tǒng)-isoCell已在Cell、Advanced Science、Small Methods、Nature Communications等期刊發(fā)表多篇文章，如下摘引了近年三篇具有代表性的文獻(xiàn)和大家分享。

• Soitu C, Stovall‐Kurtz N, Deroy C, et al. Jet‐Printing Microfluidic Devices on Demand[J]. Advanced Science, 2020, 7(23): 2001854.

• Gangoso E, Southgate B, Bradley L, et al. Glioblastomas acquire myeloid-affiliated transcriptional programs via epigenetic immunoediting to elicit immune evasion[J]. Cell, 2021, 184(9): 2454-2470. e26.

• Deroy C, Nebuloni F, Cook P R, et al. Microfluidics on Standard Petri Dishes for Bioscientists[J]. Small Methods, 2021, 5(11): 2100724.

• Deroy C, Wheeler J H R, Rumianek A N, et al. Reconfigurable microfluidic circuits for isolating and retrieving cells of interest[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2022, 14(22): 25209-25219.

• Oliveira N M, Wheeler J H R, Deroy C, et al. Suicidal chemotaxis in bacteria[J]. Nature Communications, 2022, 13(1): 7608.

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“使用 isoCell 進(jìn)行單細(xì)胞克隆工作從一開始就簡單可靠，并且已無縫地融入我們的流程中。 該程序?qū)?xì)胞很溫和，我們看到非常好的存活率，可以篩選大量克隆。 我們收到的客戶服務(wù)是優(yōu)質(zhì)的。"